Microscopie Électronique et Confocale Flashcards

1
Q

Types de microscopes

A
  • Électronique: à balayage et à transmission
  • Optique: à base de source de lumière blanche
  • Confocale: à fluoroscence avec une source de laser
  • À force atomique: par l’aspect de forces électrostatiques
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2
Q

Résolution de chaque microscope

A
  • À l’oeil: 0,2 mm
  • Optique: 0,5 µm
  • Électronique à balayage: 0,04 - 0,08 nm
  • Électronique à transmission: 0,2 nm
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3
Q

Microscopie CONFOCALE, objectif

A

microscope optique et l’image est formée par des coupes transversales SANS être perturbé par la lumière hors du plan focal
(Marvin MINSKY, 1953)

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4
Q

Source du rayon et principe de fonctionnement

A

Des filtres sélectionnés et une couleur (bleu) qui va excité les fluorochromes de l’échantillon et l’illumine, puis ces fluorophores émettent une lumière différente (vert).
Le miroir dichroïque sélectionne seulement la lumière émise par l’échantillon.
L’intensité du faisceau de laser est mesuré par des diaphragmes.
L’image est détectée grace aux miroirs galvanométriques qui permet le balayage rapide sur l’échantillon fluorescent à une hauteur fixe, détecté par un tube photomultiplicateur

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5
Q

Avantage du microscope confocal

A
  • détecter des molecules fluorescents avec une bonne résolution spatiale en 3D
  • Permet l’examen d’objet épais (0,5 µm)
  • Utilisation d’une source laser qui dure plus longtemps
  • Diminution de la photoattenuation
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6
Q

Inconvénients du microscope confocal

A

X - Photo dommage cellulaire dans toute l’épaisseur après la fluorescence et le balayage
X - Pénetration du faisceau réduite à une épaisseur > 0,5µm
X - Excitation avec une source de longueur d’onde > 450 nm

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7
Q

Microscopie électronique à transmission - objectif

A

faisceau d’électrons qui traverse l’échantillon très mince et limitée par des aberrations de lentilles magnétiques
- par l’effet Fourier ou Rayonnement X
1931 , Knoll et Ruska

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8
Q

Microscopie électronique à transmission - principe de fonctionnement

A
  • électrons sont accélérés par une génération de champ électrique (source +ve à l’anode -ve)
  • dans le vid
  • lentilles magnétiques pour projeter l’image électronique de l’échantillon (métallique/biologique/sémi-conducteur) sur un écran fluorescent
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9
Q

Réservoir d’azote liquide objectif - MET

A

refroidir une zone près de l’échantillon pour pas avoir de contamination

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10
Q

Réservoir deuxième - MET

A

pour refroidir le détecteur de rayons X

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11
Q

Canon d’électrons - MET

A

Stabilité et brillance - important dans les qualités des mesures qui améliore la résolution des images par la cohérence d’électrons

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12
Q

Source d’électrons - (MET)

A

Par

  • Émission thermoïonique (tungstène et héxaborure qui augmente la cohérence)
  • Émission d’effet de champ
  • Source Schottky à émission de champ
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13
Q

Émission thermoïonique - MET

A

électrons chauffés à haute température par circulation de courant (20 - 300 kV) et accélérés par l’anode

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14
Q

Émission de champ (Field Emission Gun) - MET

A

cold FEG à des cristallins (l’éxtraction des e- par un champ électrique INTENSE et un vide - bonne cohérence
- il réduit le travail de sortie (énergie minimum pour arracher un e- d’un noyau)

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15
Q

Pompe de vide - classification (MET)

A
  • Primaire - palette
  • Secondaire - diffusion d’huile (mais, peut contaminer l’échantillon et le microscopes - hydrocarbures)
  • Ionique - FEG et LaB6 (mais, chère en maintenance et doit être refroidi par un circuit d’eau)
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16
Q

Préparation des échantillons - contraintes (MET)

A
  1. Impact du faisceau d’e-
  2. Observation dans une chambre vide
  3. échantillon mince
  4. doit être conducteur pour pas produire de charge électrique locale
17
Q

Échantillons biologiques (MET)

A
  • Minceur de l’échantillon, par un microtome - plusieurs couches à être observées
  • Colorants pour rehausser le contraste des détails
  • Métaux lourds ajouté: Osmium, Plomb et Uranium
18
Q

La coloration -ve (MET)

A

par l’acide phosphotungstique

- l’échantillon apparaît blanc sur un fond sombre sur les photographies

19
Q

l’ombrage (MET)

A

par le tétroxyde d’osmium ou acétate d’uranyle (fibre de collagène)

20
Q

Ombrage rotatif (MET)

A

étudie le relief des structures

21
Q

Échantillons inorganiques (MET)

A
  • coupés par une scie à fil diamanté pour conserver les zones minces
  • épaisseur très mince de 10-100 nm
22
Q

fixation permet de (MET)

A

faire le pontage des protéines

et conserver la trame structurale après l’elimination de l’eau

23
Q

Exemple de fixateurs (MET)

A
  • Éthanol
  • méthanol
  • alcool 96%
  • Liquide de Cornoy: alcool éthylique + Chloroform + Acide acétique
  • les aldéhydes, glutaraldéhyde
  • Oxydants puissants (tétroxyde d’osmium)
24
Q

Déshydratation (MET)

A

Remplacement progressif de l’eau par un solvant

- par l’alcool / acétone

25
Q

Imprégnation (MET)

A

Remplacement d’une phase liquide ou gazeuse par un polymère liquide qui sera durci pour produire un échantillon de dureté homogène

26
Q

Coloration des coupes semi fines (MET)

A

bleu de toluidine

27
Q

Différence entre MET et MEB

A

MEB
- permet de visualiser la surface et la forme d’un échantillon
- détection des électrons qui rebondissent sur le spécimen (électrons Auger)
- très haute résolution de l’organisation interne des cellules. (O,15- 0,3 nm)
- profondeur de champ
MET
* visualise les électrons qui parviennent à traverser l’échantillon
* résolution de 10 - 50 nm
* échantillon extrêmement fin (10 nm)
* Les composants de l’échantillon apparaissent en formant une ombre sur l’image

28
Q

Similarités entre des MET et MEB

A
  • source: faisceau d’électrons
  • ne peuvent pas faire des images 3D
  • Même compartiment et même structures (Canon, colonne, chambre d’observation, lentilles électromagnétiques)