Clases Semana 1

Question 1

Tipos de diagnósticos de las helmintiasis

Answer 1

Directo: Observación del agente etiológico y su identificación morfológica.
Indirecto: Presencia de antígenos parasitarios o anticuerpos
específicos.
Molecular: Detección de ADN parasitario en distintos
tejidos y/o muestras biológicas.

Question 2

Factores determinantes para el diagnóstico de helmintiasis

Answer 2

1. Hábitat.
2. Ciclo de vida (directo/indirecto)/Estadio evolutivo.
3. Tipo de parasitismo (Ej: accidental).
4. Muestra y técnica de lab. adecuada.

Question 3

Tipos de muestras según localización de los helmintos

Answer 3

Intestinal: heces
Extraintestinal: esputo, frotis perianal, biopsias/sangre, piel.

Question 4

¿Qué estadios son frecuentemente utilizados en el dx de muestras de heces?

Answer 4

Huevecillos y larvas

Question 5

En esputo puedo encontrar…

Answer 5

Paragonimus sp. y larvas que realizan el ciclo de Looss.

Question 6

En frotis perianal puedo encontrar…

Answer 6

Enterobius vermicularis

Question 7

Muestra utilizada para buscar Filarias y parásitos tisulares

Answer 7

Sangre/Biopsia

Question 8

En muestra de piel puedo buscar…

Answer 8

Onchocerca volvulus y larva migrans cutánea

Question 9

Instrucciones para la toma de muestras:

Answer 9

•Nombre del paciente
• No. Identificación
• Edad, sexo, fecha, tiempo de colecta
• Recolectar las heces en un recipiente seco, limpio y hermético.
***Asegurarse que no esté contaminado con orina, agua o tierra.
• Exámenes seriados para aumentar probabilidad por ovoposición.

Question 10

¿Cómo es el reporte cuando no logramos ver parásitos/helmintos en una muestra?

Answer 10

NSOP/NSOH

**Resultado de NO SE OBSERVAN PARASITOS debe ser interpretado con precaución

Question 11

¿Qué observaciones deben realizarse en examen macroscópico de heces?

Answer 11

• Consistencia: líquida, pastosa, blanda o dura.
• Aspecto/color: pardo, acólica, negro y verde.
• Presencia de moco y sangre
• Presencia de parásitos

Question 12

¿Qué pruebas/técnicas pueden realizarse en examen microscópico de heces?

Answer 12

• Frotis directo y kato
• Concentraciones y cultivos
• Tinciones

Question 13

¿Qué observaciones deben realizarse en examen microscópico de heces?

Answer 13

-Heces oscuras: Sangrado digestivo alto (esófago, estómago, duodeno): Úlceras, parásitos (Uncinarias)
-Heces con sangre fresca: Sangrado a nivel de
colon o recto: Disentería amebiana/bacteriana, Fisuras, Carcinoma de colon.

Question 14

¿Qué reactivos se usan en el montaje directo y cuáles son las características?

Answer 14

Solución salina al 0,85% y Lugol doble
• Si la cantidad de microorganismos es poca, puede ser insuficiente para revelar su presencia.
• Depende del grosor de la suspensión.
• Es simple y rápido.

Question 15

Generalidades de la Técnica Kato

Answer 15

• Basada en el tiempo de aclaración de los huevecillos con respecto al resto de estructuras.
• Alta sensibilidad: hasta 100 huevecillos/gramo de heces
• Adecuada para huevecillos de helmintos
• No apta para larvas, protozorarios, muestras diarréicas o con excesiva
cantidad de alimentos no digeridos
• Observación a 10X

Question 16

Componentes del reactivo de Kato

Answer 16

Agua, verde malaquita y glicerina

Question 17

¿Cuál es la finalidad de la concentración de heces y cuáles son los tipos?

Answer 17

Aumento de la sensibilidad del diagnóstico.
Tipos: 
• Sedimentación (Ritchie)
• Flotación (Sheather)
• Otras (Baerman/Técnica de Knott)

Question 18

Generalidades sobre el método de sedimentación-Ritchie (éter-formalina)

Question 19

Generalidades sobre el método de concentración de Baerman

Answer 19

• Útil para el diagnóstico de formas larvales
• Basada en el termotropismo y geotropismo de las larvas
• Importante para el diagnóstico de Uncinarias y Strongyloides stercoralis

Question 20

Generalidades sobre la técnica de Loss

Answer 20

• Permite la obtención de formas larvales
• 1 parte de heces+1parte de carbón activado.
• Poner papel filtro húmedo
• Cultivar a temperatura ambiente 3-7 días.

Question 21

Generalidades sobre la ténica de Knott

Answer 21

• Técnica diagnóstica para microfilarias.

- Formalina para fijar y hemolizar GR.

Question 22

¿Qué circunstancias sustentan realizar el dx inmunológico y molecular?

Answer 22

1. Localización del helminto.
2. Baja carga parasitaria.
3. Establecer un dx específico.

Question 23

Generalidades del Elisa en detección de helmintiasis

Answer 23

1. Detecta Ag-AC
2. Se puede automatizar.
3. Cuantitativo/cualitativo.
4. Útil para: Toxocariasis, Filariasis, Cisticercosis

Question 24

Ge

Question 25

Generalidades de la inmunofluorescencia en detección de helmintiasis

Answer 25

1. Detecta antígenos o anticuerpos en tejidos y muestras biológicas
2. Rápidos y sensibles
3. Reacciones cruzadas

Question 26

Generalidades de la inmunocromatográfia en tarjeta para dx de helmintiasis

Answer 26

1. Detecta antígenos o anticuerpos generalmente en sangre

2. Importante en diagnóstico de filariasis