3) repliement des protéines Flashcards
(35 cards)
V/F: les protéines possèdent une faible stabilité de conformation?
VRAI -> elles sont dynamiques et ont bcp de stimulation en solution
V/F: les protéines dénaturées difficilement par les altérations d’interactions non-covalentes de faible énergie
FAUX -> elles sont dénaturées FACILEMENT
signification protéine non native?
protéine sans activité
signification conformation native?
molécule ACTIVE
V/F: la dénaturation et le repliement des protéines sont des processus réversibles?
VRAI -> peut avoir renaturation ou repliement ou bien dénaturation ou dépliement
le processus est-il systématique ou aléatoire (sans ordre)?
EN ORDRE (systématique) grâce au calcul de Levinthal
effet taille protéine sur le nombre d’intermédiaires?
- grosses protéines -> + nbr intermédiaires
- + petites protéines -> - nbr intermédiaires (+/-)
qu’est-ce qui détermine le repliement vers une conformation native?
résidus internes d’une protéine
type de forces repliement des protéines?
repliement des protéines dépend des forces HYDROPHOBES
conséquence contraintes au sein des polymères compacts?
formation hélices et feuillets
type de forces prédominantes
hydrophobes
les enzymes dans l’état globule fondu sont-elles actives ou non?
NON actives
V/F: la globule fondue sort + vite que conformation native
VRAI pcq état - compact vs conformation native
V/F: la globule fondue sort - vite que conformation dénaturée
VRAI pcq état + compact vs conformation dénaturée
méthodes pour dénaturation protéines
- température : caractéristiques spectrales changent
- pH : changement distribution charge et liaisons hydrogènes
- agents chaotropiques : perte liaisons hydrophobes
techniques pour détermination repliement in vitro
- spectroscopie de DC (dichroïsme circulaire) : changement spectre -> changement structure 2˚
- RMN (résonance magnétique nucléaire) : changement déplacements chimiques
principes spectroscopie de dichroïsme circulaire (DC)
- utilise lumière circulaire polarisée (LCP) comme source radiation
- donne info sur molécules chirales
- mesure différence absorption
- ∆E (terme d’ellipticité molaire) proportionnel à absorbance
avantages spectroscopie DC
- permet déterminer composition structures 2˚ qualitativement ou semi-quantitativement
- observer changements de structures 2˚
- échantillon non-détruit
limites spectroscopie DC
- donne infos GLOBALES sur protéine, mais pas infos précises sur site particulier dans protéine
- donne infos sur ensemble protéines dans solution; permet pas d’évaluer si protéine peut adopter + 1 conformation
- existe pas modèle théorique PRÉCIS
V/F: généralement, les protéines se replient in vivo seulement après leur sortie complète du ribosome
VRAI
qu’est-ce que démontrent les études in vivo?
démontrent que la conformation native est liée par nature à la structure 1˚
le processus du repliement des protéines in vivo est-il spontané ou non?
NON spontané
types de systèmes de chaperons chez procaryotes
- système TF : pour plupart des petites protéines (SANS ATP)
- système GroEL/GroES : pour protéines < 60 kDa seulement (AVEC ATP)
- système DnaJ/DnaK/GrpE : pour toutes les protéines (AVEC ATP)
DONC 2 gros et 1 mince
4 points importants dans chq système
- association chaperonne avec ribosome?
- utilise énergie ou pas?
- type interaction chaperonne + protéine?
- quels types protéines utilisent système (gros, moyen, petit…)?