Anesthésie

Question 1

Particularités physiologiques/anatomiques des oiseaux

Answer 1

• Échange gazeux efficaces ++ = éq atteint + rapidement entre gaz inspirés et sang artériel
• Réveil, induction et changements de profondeur sont rapides
• • sujets au surdosage

Question 2

Évaluation pré-anesth

Answer 2

Anamnèse
Examen clinique (environnement, à distance,physique)
Analyses sanguines

Question 3

Période de jeûne

Answer 3

Buts:
1. Vidanger jabot
2. Réduire V tractus digestif
= faciliter ventilation

Temps
- petits (0-2h), Moyens pisttacidés (2-4h), grands (4-6h), aras/cacatoès (toute la nuit)

Question 4

Équipement

Answer 4

• Bain
• Isoflurane ou sévoflurane
• Masques induction
• tubes endotrachéaux (pas ballonnets en raison des anneaux cartilagineux complets trachée)

Question 5

Pré-med

Answer 5

Opioides (butorphanol)
benzodiazépines (midazolam)
parfois propofol pour induction

Question 6

2 techniques induction anesth

Answer 6

1. 4% pour 2 respirations et après 2%
2. 1% et on aug de 0,5% q 15-30 sec = si pas de prob respi

Avec O2 à 2L/ min

Question 7

Canulation sac aérien

Answer 7

indications:

• Intervention a/n cavité orale, VRS, trachée
• Oiseau souffrant obstruction VRS

Question 8

ventilation positive intermittente

Answer 8

INDISPENSABLE

1) FR et aug V tidal plus lentes
2) Inspiration/expiration= actifs, donc relaxation musculaire par l’anesth dim l’action des mm. intercostaux
3) Obstruction courante des tubes de petit diamètre / sécrétions

Fréq= 8-35 mvts respi/ min
P max= 15 cm H2O

Question 9

Réveil pts importants

Answer 9

1) contrôler tête / ailes
2) Surveiller FR et FC
3) Régurgutation, sécrétions dans cavité buccale
4) T, réchauffer graduellement
5) éviter changements brusques de position

Extubation= mvts volontaires langue

retour en cage

• se tient debout
• T= 27-30°C
• Nourriture tout suite
• eau quand complètement réveillé

Question 10

Monitoring

Answer 10

Pareil que chiens/chats