Asselin 4- Traduction + Fin transcription eucaryote Flashcards

(40 cards)

1
Q

Explique la reconnaissance d’un promoteur pour les ARN polymérases chez les eucaryotes

A
  • Les ARN polymérases eucaryotes ne peuvent
    reconnaître directement leurs promoteurs.
  • Des facteurs de transcription généraux sont
    toujours requis afin de permettre la liaison de
    l’ARN polymérase au bon promoteur et
    d’initier la transcription, quelque soit
    l’identité du gène impliqué.
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2
Q

Explique la reconnaissance du promoteur dans le cas de l’ARN polymérase 2

A
  • In vitro, ordre défini de facteurs de
    transcription généraux afin d’assurer le
    recrutement de l’ARN polymérase II et
    l’initiation de la transcription.
    – TFIID lie la boite TATA par
    l’intermédiaire de la sous-unité
    TBP.
    – TFIIA et TFIIB forment un complexe
    avec TFIID.
    – Le complexe lie l’ARN polymérase II
    lié à TFIIF.
    – L’addition de TFIIE et TFIIH
    complète le complexe de pré- initiation.
  • In vivo, des protéines affectant la
    structure de la chromatine, des
    facteurs de transcription régulateurs et
    des co-activateurs facilitent
    l’assemblage
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3
Q

Explique le rôle de TBP (ARN polymérase 2)

A

– Lie la boite TATA des
promoteurs de l’ARN
polymérase II, et le sillon
mineur de l’ADN
– Lie de nombreux facteurs de
transcription par sa surface
convexe
– Induit un pli dans l’ADN
– Peut aussi lier des protéines
associées à des promoteurs
sans boite TATA (RNA
polymérase I et III), sa
spécificité dépendant de ces
interactions

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4
Q

Quel est le rôle de TFIIH

A

– Activité hélicase qui déroule
l’ADN et ouvre les deux brins
– Activité kinase qui phosphoryle la queue C-terminale de la grosse sous-
unité de l’ARN polymérase II (sur Ser et Thr), permettant le
relâchement de celle-ci du
promoteur
– TFIIH permet donc de passer d’un complexe de pré-
initiation à un complexe d’initiation.

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5
Q

Explique les fonctions des 3 ARN polymérase dans la TERMINAISON de la transcription eucaryote

A
  • ARN polymérase I
    – Un facteur protéique reconnaît un signal de
    terminaison de 18 nt dans l’ARN.
  • ARN polymérase II
    – Clivage du transcrit 10-35 nt en aval du signal de
    polyadénylation AAUAAA, et addition d’un queue
    polyA. L’ARN polymérase II continue la transcription
    au-delà du site de clivage.
  • ARN polymérase III
    – Courte série de Us sans besoin de protéines
    auxiliaires
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6
Q

Nomme et donne les fonctions de tous les ARN

A
  • ARN codant:
    – ARN messager (ARNm): information qui dicte la séquence d’acides aminés durant la synthèse du
    polypeptide. (20,225 gènes chez l’homme)
  • ARN non codant: (37,595 gènes chez l’homme)
  • Impliqué dans la traduction
    – ARN de transfert (ARNt): amène l’acide aminé correct à l’ARNm et à la chaîne polypeptidique en
    croissance
    – ARN ribosomal (ARNr): constituant des ribosomes, le site de la synthèse protéique
  • Impliqué dans les modifications de l’ARN
    – snoARN (small nucleolar ARN, contrôle de la production d’ARNr)
    – snARN (small nuclear ARN, contrôle de l’épissage)
  • Impliqué dans l’expression des gènes
    – MicroARN (miARN): régulateur de la traduction et stabilité des ARNm
    – Petits ARN interférents (siARN): inhibiteur de la production de virus
    – piARN: inhibiteur de transposition dans les lignées germinales
    – lncARN (long non-coding ARN): régulation de la transcription, de la chromatine
    – ARN circulaire (circARN): régulation de l’expression des gènes
    – ARN Enhancer (eRNA): régulation de l’expression des gènes
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7
Q

Donne la définition de :Modifications post-transcriptionnelles des ARNs eucaryotes

A
  • Changements chimiques des ARNs primaires
    eucaryotes nécessaires avant que ceux-ci
    soient fonctionnels
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8
Q

Explique les 4 type d’ARNr dans la Modifications post-
transcriptionnelles des ARNr

A

– 18S fait partie de la petite
sous-unité ribosomale.
– 28S, 5.8S et 5S font partie
de la grosse sous-unité
ribosomale.
– 150 à 200 copies
arrangées en tandem (sur
différents chromosomes
(5 chez l’homme)) d’un
gène ribosomal encodant
un ARN précurseur
composé des ARNr 18S,
5.8S et 28S, séparés par
des intervalles transcrits

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9
Q

Explique les étapes de la Modifications post-
transcriptionnelles des ARNr

A
  • L’ARN polymérase I transcrit l’unité
    de transcription du pré-ARNr dans
    le nucléole.
  • Le pré-ARNr est clivé pour enlever
    les intervalles transcrits.
  • Le pré-ARNr est modifié par ajout
    de groupements méthyl surtout
    sur les riboses des ARNr 28S, 18S et
    5.8S, ce qui les protègeraient du
    clivage.
  • La méthylation et le clivage sont
    guidés par des snoARNs (small
    nucleolar RNAs) qui lient des
    régions complémentaires de
    l’ARNr et ciblent des endroits
    spécifiques pour ces modifications.
  • 52% du pré-ARNr est conservé.
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10
Q

Décrit c’est quoi un ARNt et par quelle ARN est il produit

A
  • Plusieurs ARNt différents produits dans une
    cellule
  • L’ARN polymérase III transcrit l’unité de
    transcription du pré-ARNt.
  • Un ARNt mature de 70-90 nt est chimiquement
    modifié, et forme une structure secondaire en
    feuille de trèfle, causée par l’appariement de
    bases entre séquences complémentaires (forme
    plusieurs boucles en épingle à cheveux).
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11
Q

Explique les étapes des Modifications post-
transcriptionnelles des ARNt

A
  • L’ARN polymérase III transcrit l’unité de
    transcription du pré-ARNt.
  • 4 modifications du pré-ARNt:
    – À l’extrémité 5’, enlèvement d’une
    séquence de tête de 16 nt
    – À l’extrémité 3’, enlèvement des
    deux nt terminaux et
    remplacement par CCA
    – Modifications chimiques de 10- 15% des nt de l’ARNt: méthylation
    de bases et de sucres, création de
    bases inhabituelles comme
    ribothymine, pseudouridine,
    inosine
    – Enlèvement d’une séquence
    interne, un intron ARN de 14 nt,
    pour certains ARNt: clivage précis
    par une ARN endonucléase et
    ligation par une ARN ligase
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12
Q

Explique ce que sont Modifications post-transcriptionnelles des ARNm (bactérie vs eucaryote)

A
  • Chez les bactéries:
  • ARNm prêt à être traduit
    même avant la fin de la
    transcription (transcription- traduction couplée)
  • Chez les eucaryotes
  • ARN synthétisé par l’ARN
    polymérase II en pré-ARNm
    – Transcrit primaire de longueur
    variable (ARN nucléaire
    hétérogène)
    – Pré-ARNm modifié en ARNm
    pour être traduit
  • Pose de la coiffe
  • Polyadénylation
  • Épissage
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13
Q

Explique le rôle de la coiffe dans les Modifications post-transcriptionnelles des ARNm

A
  • Pose de la coiffe:
    – Ajout d’un nucléotide (nt)
    modifié (guanosine méthylé en
    position 7 de l’anneau purine)
    par lien 5’-5’ avec le premier nt
    du transcrit primaire, peu après
    l’initiation
    – Méthylation possible des
    riboses du premier et
    deuxième nt de l’ARN
    – Rôle de la coiffe:
    * Stabilité de l’ARNm en
    protégeant de la dégradation
    par des nucléases
    * Signal assurant le
    positionnement de l’ARNm sur
    le ribosome lors de l’initiation
    de la traduction
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14
Q

Explique le rôle de la polyadénylation dans les Modifications post-transcriptionnelles des ARNm

A
  • Polyadénylation: création des extrémités
    3’ des ARNm.
    – Clivage de l’ARN 10-35 nt en aval
    d’une séquence de polyadénylation
    AAUAAA et en amont d’une
    séquence G/U
    – Addition de 50 à 250 A par une
    polyA polymérase qui catalyse
    l’addition de A sans avoir besoin de
    matrice
    – Rôle de la queue polyA:
    * Stabilité de l’ARNm en
    protégeant de la dégradation
    par des nucléases
    * Signal reconnu par des
    protéines permettant
    l’exportation de l’ARNm du
    noyau au cytoplasme
    * Signal reconnu par le ribosome
    indiquant que l’ARNm peut être
    traduit
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15
Q

Explique ce qu’est : Épissage: mARN de la β-globine dans dans les Modifications post-transcriptionnelles des ARNm

A
  • Les précurseurs de la plupart
    des ARNm contiennent des
    introns, séquences présentes
    dans le pré-ARNm qui
    n’apparaissent pas dans l’ARNm
    mature fonctionnel.
  • Les séquences apparaissant
    dans l’ARNm final sont les
    exons.
  • Le processus d’enlever les
    introns et de lier les exons se
    nomme épissage.
  • Près de 15% des maladies
    humaines héréditaires sont
    causées par des défauts
    d’épissage.
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16
Q

montre comment Le nombre d’introns
varie grandement d’un
gène à l’autre (épissage)

A
  • β-globine: 2 introns; 3
    exons
  • Insuline: 2 introns; 3
    exons
  • β-actine: 5 introns; 6
    exons
  • Albumine: 14 introns; 15
    exons
  • Thyroglobuline: 36
    introns; 37 exons
  • Titine: 233 introns; 234
    exons
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17
Q

C’est quoi l’épissage (sans mécanisme)

A

– Des séquences de l’intron au site
d’épissage 5’ et au site d’épissage 3’
assurent la précision de l’épissage, c’est- à-dire où les deux extrémités d’un
intron seront clivées.
– Le retrait des introns est catalysé par un
spliceosome, un complexe contenant 5
types de snARNs (small nuclear ARNs)
associés à des protéines (snRNPs).
– Les snARNs sont impliqués dans la
reconnaissance des sites d’épissage,
dans l’assemblage du spliceosome et
dans la catalyse de l’épissage.
– Séquences de l’intron conservées:
* L’extrémité 5’ d’un intron commence
par les nt GU, et l’extrémité 3’ par les nt
AG, en plus de quelques nt conservés à
proximité.
* Une boite de branchement en amont
de l’extrémité 3’ est conservée.

18
Q

Explique les étapes de l’épissage dans les Modifications post-transcriptionnelles des ARNm

A
  • L’épissage survient suite à la liaison
    séquentielle de snRNPs au pré-ARNm.
    – Liaison du snRNP U1 à la jonction 5’ de
    l’intron par pairage
    – Liaison du snRNP U2 à la boite de
    branchement
    – Liaison des snRNPs U4/U6 et U5 qui
    rapprochent les extrémités de l’intron par
    des interactions entre les snRNPs U1 et U2
    – Clivage de l’extrémité 5’ de l’intron
    – Jonction de l’extrémité 5’ avec un nt A
    localisé dans la boite de branchement, et
    création d’un lasso
    – Clivage de l’extrémité 3’ de l’intron
    – Relâchement et dégradation de l’intron
    sous forme de lasso, et ligation des exons
    – Liaison d’un complexe de jonction des
    exons (EJC) entre les exons soudés (rôle
    dans l’exportation efficace des ARNm du
    noyau, dans la localisation et la traduction
    des ARNm, et dans la dégradation des
    ARNm (NMD)
19
Q

Explique le rôle des introns dans les Modifications post-transcriptionnelles des ARNm

A

Rarement, peuvent donner des produits
fonctionnels (snoARN, protéines)
Permet l’épissage alternatif par
utilisation de différentes combinaisons
d’épissage (saut d’exon, site alternatif
d’épissage, intron retenu, exons
mutuellement exclusifs)
* Utilisation de séquences qui
activent (splicing enhancer) ou
inhibent (splicing silencer)
l’utilisation de sites d’épissage
* Production de centaines de
milliers de protéines à partir
d’un nombre restreint de gènes
(90% des 20,000 gènes encodant
des protéines)

Permet l’évolution de nouveaux gènes
par des événements de recombinaison
entraînant de nouvelles combinaisons
d’exons (exon shuffling), ou une
duplication d’exons

20
Q

Donne un Exemple d’épissage alternatif Forme sécrétée ou membranaire des IgM

A
  • Épissage alternatif: utilisation de
    certains sites d’épissage au lieu
    d’autres, et création de protéines
    avec des fonctions différentes
  • Plus de la moitié des gènes sont
    sujets à l’épissage alternatif.
  • Exemple de l’immunoglobuline M
    (IgM):
    – IgM sous deux formes
    (sécrétée ou membranaire)
    – Le gène possède deux sites de
    polyadénylation alternatifs.
    – L’épissage alternatif produit
    une protéine avec un domaine
    transmembranaire, ou une
    protéine sécrétée.
21
Q

Que fait le domaine c-terminale de l’ARN polymérase 2

A

coordonne co-transcriptionnellement les modifications de l’ARN par l’intermédiaire de répétitions phosphorylées sur Sérines.

  • Domaine C-terminal de l’ARN polymérase II

– 57 répétitions de 7 acides aminés (Tyr-
Ser-Pro-Thr-Ser-Pro-Ser)

– Code CTD: phosphorylation
différentielle créant une plateforme
d’interactions avec des complexes
protéiques assurant la formation de la
coiffe, l’épissage et la polyadénylation

  • Exemple:
    – Phosphorylation sur Ser5: recrutement
    du complexe formant la coiffe
    – Phosphorylation sur Ser5 et Ser2:
    complexes d’épissage recrutés
    – Phosphorylation sur Ser2 et Thr4:
    complexes de polyadénylation
  • Changements des patrons de
    phosphorylation durant la transcription
22
Q

Dans le Métabolisme de l’ARNm explique ce qu’est la stabilité des ARN

A

– ARNt et ARNr stables
– Demi-vie des ARNm variable et régularisée
(séquences AU-riches et gènes immédiats
précoces impliqués dans la prolifération cellulaire)

23
Q

Quelles sont les 5 composantes importantes de la traduction

A
  • Ribosomes
  • ARNt
  • Aminoacyl-ARNt synthétases
  • ARNm
  • Facteurs protéiques
24
Q

C’est quoi la fonction des ribosomes

A

– responsable de la
synthèse des polypeptides
* Oriente l’ARNm et les ARNt
dans la bonne relation l’un
par rapport à l’autre
* Catalyse la formation des
liens peptidiques entre
acides aminés

– Composé d’ARNr et de
protéines formant deux
sous-unités (40S (30S) et
60S (50S))
– ARNr catalyseur du lien
peptidique (ribozyme)
– 4 sites de liaison:
* Pour l’ARNm
* Pour l’ARNt nouvellement
arrivé (site A (aminoacyl))
* Pour l’ARNt portant la
chaine polypeptidique
(site P (peptidyl))
* Pour l’ARNt déchargé (site
E (exit))

25
Explique la fonction de l'ARNt
– Adaptateur qui sert d’intermédiaire entre l’acide aminé et l’ARNm – Chaque adaptateur possède deux sites, un qui lie l’acide aminé, l’autre (anticodon) qui reconnaît l’ARNm et la séquence codant pour l’acide aminé (codon). – Chaque ARNt ne lie qu’un seul acide aminé. – L’ARNt est lié à l’acide aminé par un lien ester entre l’acide aminé et le 3’-OH du A de l’extrémité 3’ des ARNt. – L’acide aminé pour chaque ARNt est choisi par les enzymes catalysant la formation du lien ester (20 aminoacyl-ARNt synthétases). – L’anticodon est une séquence de 3 nt de l’ARNt complémentaire à un ou plusieurs codons de l’ARNm. – Un ARNt peut reconnaître plus d’un codon grâce à une flexibilité de pairage avec la 3e base du codon (« wobble »): un ARNt peut reconnaitre plus d’un codon.
26
C'est quoi qui permet le « wobble ».
Un appariement de bases différent entre codons et anticodons
27
Explique Lien ester entre ARNt et acide aminé des Aminoacyl-ARNt synthétases
– Lient les acides aminés appropriés aux ARNt correspondant – Une aminoacyl-ARNt synthétase pour un acide aminé (20) – Catalysent la formation d’un lien ester entre l’acide aminé et l’ARNt
28
Explique l'Activation d’un acide aminé par l’aminoacyl-ARNt synthétase
– L’acide aminé et l’ATP lient le site actif de l’enzyme. – L’ATP est hydrolysé avec relâche de pyrophosphate, entraînant la liaison de l’AMP et de l’acide aminé au site actif. – L’AMP est déplacé par l’ARNt, créant ainsi un ARNt aminoacylé. – L’ARNt aminoacylé est relâché de l’enzyme.
29
Explique ce que font les ARNm dans la traduction
* L’ARNm apporte l’information encodant le polypeptide au ribosome. * L’ARNm dirige l’ordre dans lequel les acides aminés sont liés durant la synthèse protéique. * Structure de l’ARNm: – Procaryote: * Région 5’ non-traduite avec site de liaison du ribosome * Site d’initiation de traduction AUG (le plus souvent) * Séquence codante suivie d’un codon d’arrêt de traduction (UAG, UAA, UGA) * Région 3’ non-traduite – Eucaryote: * Coiffe et région 5’ non-traduite * Site d’initiation de traduction AUG (le plus souvent) * Séquence codante suivie d’un codon d’arrêt de traduction (UAG, UAA, UGA) * Région 3’ non-traduite et queue polyA
30
Explique la Reconnaissance de l’orientation de l’ARNm par les ribosomes (chez eucaryotes vs procaryotes)
* Procaryotes: – Site de liaison du ribosome (séquence Shine-Dalgarno) de 3 à 9 purines dans la région 5’ non-traduite un peu en amont du codon d’initiation AUG. Région complémentaire à une séquence riche en pyrimidines de l’ARNr 16S retrouvé dans la petite sous-unité ribosomale * Eucaryotes: – Coiffe
31
Explique les étapes de la traduction et l'utilisation de facteurs protéiques
* Étapes de la traduction: – Initiation – Élongation – Terminaison * Des facteurs protéiques sont requis pour l’initiation, l’élongation et la terminaison des chaines polypeptidiques.
32
Explique l'Initiation de la traduction chez les bactéries
* Trois facteurs d’initiation (IF1, IF2-GTP, IF3) lient la petite sous- unité ribosomale 30S. * IF2-GTP permet la reconnaissance spécifique des ARNt avec méthionine formylée. * L’ARNt initiateur, portant une méthionine formylée, et l’ARNm lient 30S, pour former le complexe d’initiation 30S, en relâchant IF3. L’ARNt initiateur se retrouve au site P. * La grosse sous-unité ribosomale 50S lie 30S pour former le complexe d’initiation 70S, entraînant l’hydrolyse de GTP et le relâchement de IF2 et IF1.
33
Explique Initiation de la traduction chez les eucaryotes (différence avec bactérie)
* Différences avec les bactéries: – ARNt initiateur porte une méthionine non formylée – Sous-unités ribosomales plus grosses – Différents facteurs d’initiation (eIF)
34
Explique les étapes de l'Initiation de la traduction chez les eucaryotes
– Facteur d’initiation eIF2 avec GTP liant l’ARNt initiateur – Formation d’un complexe de préinitiation 43S (ARNt initiateur, facteurs d’initiation, petite sous- unité ribosomale) liant l’ARNm – eIF2-GTP hydrolysé en GDP et perte des facteurs d’initiation – La petite sous-unité ribosomale portant l’ARNt initiateur parcourt l’ARNm jusqu’au premier codon AUG habituellement. L’AUG est précédé d’une séquence conservée (séquence de Kozak consensus, ACCAUGG). – Appariement de l’ARNt à AUG et recrutement de la grande sous- unité ribosomale (hydrolyse de GTP)
35
Comment que L’extrémité 3’ des ARNm peut promouvoir l’initiation de la traduction.
* Interaction entre – Protéine liant la queue polyA (PABP) – Facteur d’initiation de traduction (eIF4G) * Promotion de l’initiation de la traduction * Stabilisation des extrémités 5’ et 3’ des ARNm
36
Explique le mécanisme général de l' Élongation de la chaîne polypeptidique chez les bactéries
– Liaison de l’ARNt aminoacylé au site A (facteur d’élongation et hydrolyse de GTP nécessaires) – Formation du lien peptidique entre le groupe carboxyl de l’acide aminé au site P et le groupe amino de celui du site A pour former le peptidyl ARNt (catalysé par l’ARNr 23S (ribozyme) de la grosse sous-unité). L’énergie est fournie par le lien ester ARNt-acide aminé) qui se retrouve au site A. – Translocation: l’ARNm avance de trois nt, le peptidyl ARNt en A se déplace au site P et l’ARNt vide se déplace au site E (besoin d’un facteur d’élongation et d’hydrolyse de GTP). – Plusieurs ribosomes peuvent être attachés au même ARNm (polyribosome).
37
Explique le mécanisme de Terminaison de la chaîne polypeptidique chez les bactéries
– Les codons de terminaison UAG, UAA et UGA ne sont pas reconnus par des ARNt. – Un fois au site A, des facteurs de largage avec GTP lient le codon de terminaison. – Cette liaison entraine le relâchement du polypeptide de l’ARNt peptidyl par clivage hydrolytique et hydrolyse de GTP. – Le ribosome se dissocie.
38
Nomme les type de mutation dans la traduction
* Types de mutation affectant une paire de bases: – Substitutions: * Mutation faux-sens * Mutation non-sens * Mutation silencieuse – Insertions ou délétions: * Changement de cadre de lecture * Types de mutations affectant de longs segments d’ADN: – Insertion et délétion – Duplication – Inversion – Translocation réciproque entre chromosomes
39
Explique Contrôle de la qualité des ARNm: Dégradation des ARNm non-sens (NMD)
* Dégradation des ARNm non-sens (NMD): identification des ARNm avec des mutations non- sens (protéines tronquées) – Reconnaissance d’un codon d’arrêt dans l’ARNm avant le dernier complexe de jonction des exons (EJC), donc codon d’arrêt prématuré – Arrêt de la traduction et destruction de l’ARNm
40
Explique le Contrôle de la qualité des ARNm: Dégradation des ARNm sans codon de terminaison (ND)
* Dégradation des ARNm sans codon de terminaison (ND): identification des ARNm avec des mutations qui enlèvent des codons de terminaison – Ribosome bloqué à la fin d’un ARNm sans codon de terminaison – Liaison d’un complexe de dégradation de l’ARN au site A vide de l’ARNm, et dégradation de l’ARNm