C8 Flashcards
(44 cards)
Comment inactiver petits inhibiteurs de CDK de famille CipKip? (P27KIP)
- Dilution
- Export nucléaire
- Destruction par la SCF (Skp, Cullin, F-box-containing complex)
Inactivation des CIPKIP via dilution (p27)
• par ⬆️ E2F
• par ⬇️ p27 —> séquestré par CyclineD-CDK4 (active)
—> positive feedback
Inactivation des CIPKIP via export nucléaire (p27)
export du noyau par phosphorylation
—> bloqué le NLS
kinase AKT active ++
—> inactivation du contrôle par PTEN
Inactivation des CIPKIP via dégradation (p27)
Par complexe SCF (ubiquitine ligase)
—> induit ubiquitinylation
—> nécessite 6 sites de phosphorylation
—> phosphorylés par les CDK-cyclines (transition G1-S)
• mécanisme de proximite induite par plusieurs sites de phosphorylation
Voie de dégradation par l’ubiquitine
Protéine de 76 aa —> attachée aux protéines qui vont être dégradés par le proteasome
—> s’attache à une lysine interne de la protéine cible
protéasome
—> 28 proteases en 4 anneaux
—> cap à chaque extrémité - reconnaît une chaîne polyubiquitine (4 unités long minimum)
—> cap recycle l’ubiquitine & déplie les protéines pour entrer dans le protéasome
Quelle famille d’enzyme contrôle la dégradation des cyclines? Exemples importants
Enzymes de la famille “ubiquitine ligase” (E3)
2 types d’E3 ligases importants pour le cycle c
-
APC (anaphase promoting complex)
—> M & G1 -
SCF (Skp, Cullin, F-box-containing complex)
—> G1/S
—> constitutive
Rôle de L’ubiquitine-ligase de type SCF
Rôle essentiel pour la transition G1-S
Responsable de:
•destruction de protéines phosphorylees
(Particulièrement Cycline D&E)
—> sous-u à boîte F (F box) reconnaît le substrat phosphorylé
(Phosphorylation des substrats active la dégradation via complexes SCF)
—> SCF dégrade phospho-P27 aussi
Récapitulation des modes de régulation des CDK (7)
✅1) Transcription des cyclines et formation d’un complexe avec CDK
✅2) Phosphorylation de la thréonine 160 dans la boucle d activation (boucle T) par CAK
❌3) Phosphorylation de la tyrosine 15 par Wee1 (négatif)
✅4) Déphosphorylation de la tyrosine 15 par la phosphatase Cdc25
✅5) Association avec les CDKi (Positif p27-G1)
❌6) Association avec les CDKi (généralement négatif)
❌7) Dégradation par le proteasome (négatif)
Cause moléculaire de l’initiation de la mitose
⬆️ de l’activité CDK-Cycline
—> synthese des Cyclines mitotiques debute en phase S
La situation en fin G2 et transition vers M
fin G2:
CDK1-CyclinA – Actif et au noyau
CDK1-CyclinB - Inactif (non-phosphorylé) au cytosol
Wee1 Actif
Cdc25C exclus du noyau
Plk1 (polo-like kinase 1) inactif
Transition vers M:
Événement clé: Activation de CDK1-CyclinB via cdc25 —> activé par plk1 (plk1 inhibe aussi Wee)
CHATGPT:
Accumulation cycline B
—> cycline B s’associe à CDK1 (complexe cycline B-CDK1, ou MPF – Maturation Promoting Factor)
Phosphorylation inhibitrice de CDK1 :
—> kinases Wee1 phosphorylent CDK1 sur des sites inhibiteurs (Tyr15 et Thr14), = complexe inactif
Activation de CDC25 :
—> CDC25 (phosphatase) déphosphoryle CDK1, supprimant les phosphates inhibiteurs et activant le complexe cycline B-CDK1
—> Activation renforcée par une boucle de rétrocontrôle positif (CDK1 phosphoryle et active davantage CDC25).
• Inhibition de Wee1 par CDK1 :
—> Une fois CDK1 activé, il inhibe Wee1, supprimant son effet inhibiteur
• Régulation par Aurora A et Plk1 :
—> Aurora A phosphoryle et active des cofacteurs comme TPX2 pour stabiliser les microtubules du fuseau mitotique.
—> Plk1 (Polo-like kinase 1) active CDC25 et inhibe Wee1, renforçant encore l’activation de CDK1
3 systèmes d’inhibition fort de phase M
1) Wee1
2) exclusion nucléaire Cdc25C
3) exclusion nucléaire CDK1-CyclineB
Régulateurs du complexe APC
CDC20 et CDH1
• régulés par phosphorylation par CDK1
CDC20 —> actif principalement pendant la mitose (G2/M)
phosphorylation —> activé —> activation de l’APC/C
CDH1 —> actif après la mitose
• phosphorylation —> inhibé par CDK1-CyclkneB (durant la mitose)
• fin de la mitose, lorsque les niveaux de cycline B chutent, CDH1 devient active et peut activer l’APC/C
L’Activité APC corrèle avec la dégradation des cyclines
RÉSUMÉ des mécanismes de contrôle du cycle
Comment l’APC arrête de détruire les cyclines en G1?
Il s’autodégrade après avoir dégradé tous les autres substrats
1) Prophase
- Duplication des centrosomes
- Épaississement de la chromatine
- Condensation du matériel en chromosomes avec un centromère
2) Pro-métaphase
- Disparition de la membrane nucléaire => mixage des « plasmes »
- Formation d’un réseau de microtubules organisé autour des centrosomes
3) Métaphase
- Migration équatoriale des chromosomes
- Stabilisation de fuseaux à travers la cellule jusqu’aux pôles
quand conditions de tension sont satisfaites, on passe a l’anaphase
4) Anaphase A & B
- Migraron des chromosomes sur les fuseaux mitorques vers les pôles.
- et creer un espace entre les 2 poles
5) Télophase
- Dénouement des chromosomes
- Reformation de la membrane nucléaire
- début de scission caire
6) Cytokinèse
- séparation physique de la membrane cellulaire des 2 cellules soeurs
Pourquoi condenser les chromosomes en mitose? (3)
3 problèmes :
- Grandeur des génomes eucaryotiques
- Manque de rigidité (flexibilité) naturelle de la chromatine
- caténation des chromosomes en phase S
—> l’entrelacement des molécules d’ADN qui se produit pendant la réplication de l’ADN
Solutions au problème de la grandeur des génomes eucaryotes (7)
1) diviser le génome en chromosomes
2) diviser les chromosomes avec centromères
3) centromères à position “centrale” dans les chromosomes (chromosome métacentrique)
4) compacter l’ADN en nucleosomes
5) compacter les nucleosomes en chromatine mitotique
6) l’échafaudage chromosomique
7) la formation de super tours dans l’ADN
Chromatine mitotique
Histone H1 contribue à la compaction de la chromatine lors de la mitose
—> tres important pour la flexibilité
Mécanisme incompris
Échafaudage chromosomique
Boucles de chromatine s’attachent de façon radiale sur une structure protéique (échafaudage chromosomique)