DIAGNÓSTICOS Flashcards

1
Q

S. viridans

A

Muestras: sangre o punción absceso

Inoculación directa (sin tinción de gram previa) en medios de cultivo sólidos suplementados con sangre, CO2 al 5%.

Identificación:

  • Pruebas primarias: gram, catalasa
  • Pruebas secundarias: Bioquímicas, MALDITOF, genéticas

Siembre antibiograma

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Q

S. pneumoniae

A

Otitis media y sinusitis atb empírico, si de repetición dx microbiológico

Muestras:

a) Otitis media: timpanocentesis
b) Neumonía:
- Esputo vía aérea distal. Criterios Murray y Washington
- Broncoaspirado

  1. Tinción gram
  2. Cultivo en agar sangre o agar chocolate al 5% de CO2
  3. Pruebas directas
    • Primarias: catalasa, b-hemólisis, soluble en bilis y sensible a optoquina
    • Secundarias: bioquímicas, genéticas, MALDITOF
  4. Serología: ELISA, ID, inmunocromatografía
  5. Antibiograma
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3
Q

S. pyogenes

A

Faringitis estreptocócica:

Muestra: exudado faringoamigdalar (torunda, frotar sin tocar el resto
de la boca)

Identificación:
- Cultivo: medio suplementados con sangre. Colonias B-hemolíticas.
Pruebas primarias (gram, catalasa).
Contacto con antisueros hasta que se produce precipitado del
inmunocomplejo.
+ antibiograma

  • Prueba rápida de detección de Ag del estreptococo directamente
    sobre muestra clínica. Torunda, dilución, emulsión, papel de filtro con
    Ac y precipitado de inmunocomplejos.

Fascitis necrosante –> muestra: desbridamiento quirúrgico o pinchazo de ampollas

Fiebre reumática –> evidencia de infección previa + criterios mayores y menores

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4
Q

S. agalactiae

A

Personas infectadas

  • Muestras: LCR, sangre
  • Cultivo: medios suplementados con sangre y atb (eliminan flora concomitante), al 5% de CO2. Gram, b-hemólisis (5% no), catalasa y látex para detección de ag de grupo o MALDITOF

Screening embarazadas:

  • Muestra: exudado vagino-rectal
  • Semanas 35-37 gestación. Una o dos torundas (1º muestra vaginal). Indicar que se trata de un screening y si hay alergia a b-lactámicos (antibiograma)
  • 1º Medio líquido selectivo
  • 2º: agar Granada (detecta pigmento bacteriano rojo pero no las no hemolíticas) y agar sangre (sí detecta no hemolíticos).
  • 3º: tras identificación aglutinación con antisuero para grupo
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5
Q

GÉNERO STAPHYLOCOCCUS

A

MUESTRA BACTERIEMEIA/ENDOCARDITIS S. AUREUS: hemocultivos, 2/3 extracciones, en cada una 1 botella aerobia y otra anaerobia (100 ml/botella)

  1. Medio de cultivo líquido (caldo) –> aumento C02 cambia base de la botella de color, salta detector que indica crecimiento bacteriano

INFECCIÓN CATÉTER COAGULASA NEGATIVAS
- Catéter retirado
1. Maki (parte externa). > 15 colonias
2. Caldo de cultivo (parte interna) turbio
- Catéter no retirado: comparación vía periférica con vía central.
Hemocultivo con sus 2 botellas.

GÉNERO STAPHYLOCOCCUS

  1. Muestra
  2. Tinción de Gram
  3. Cultivo sólido (agar sangre) –> colonias visibles en 24 h
    - B- hemolíticos, coloración dorada (S. aureus)
    - No hemolíticos, coloración grisácea (coagulasa -)
  4. Catalasa, coagulasa, pruebas bioquímicas, MALDITOF
  5. Antibiograma siempre
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6
Q

Actinomyces

A

Muestra: punción-aspiración del absceso con aguja y jeringa o cirugía abierta (obtener pus).
Transporte en anaerobiosis

  1. Observación de gránulos de azufre al microscopio: tinción de gram, masa de bacilos GP
  2. Cultivo en agar sangre. Medios convencionales con incubación aerobia y anaerobia
    Crecimiento lento, > 2 semanas
  3. Pruebas primarias, MALDITOF

Ziehl- Neelsen para distinguir de Nocardia

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7
Q

B. cereus

A

Muestra: según cuadro clínico (sangre)

  1. Cultivo en agar sangre: grandes, se observa B-hemólisis
  2. Pruebas primarias
  3. MALDITOF
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8
Q

B. anthracis

A

Muestra:

  • Carbunco cutáneo: frotar una torunda en la zona oscura o biopsia cutánea
  • Carbunco inhalatorio: sangre
  1. Gram directo o tinciones específicas –> tinta china (cápsula)
  2. Cultivo en agar sangre: colonias con prolongaciones en cabeza de medusa
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9
Q

Listeria

A

Muestra:

  • Hemocultivo
  • LCR (punción lumbar): 2 tubos estériles, 1 para microbiología y 1 para bioquímica. Mililitros/microorganismo
      • 1 / bacterias
      • 2 / virus
      • 1 / hongos
  1. Cultivo en medios habituales agar sangre o selectivos
  2. Tinción de gram
  3. B-hemólisis –> CAMP + (si potencia la b-hemólisis de otra b-hemolítica en cultivo
  4. Catalasa +
  5. Movilidad (flagelos peritricos)
  6. MALDITOF

Necesita estufa: conservación a 35ºC

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10
Q

Corynebacterium diphteriae

A

Muestra: recoger con hisopo de algodón, desde el borde de la lesión hasta el centro de la misma con profundidad
Emplear medios de transporte, conservar a Tª ambiente el menor timepo posible

  1. Tinción de gram
  2. Cultivo en agar sangre de cordero al 5% de CO2 o agar sangre con cistina telurito (selectivo y diferencial, colonias negras)
    Colonias visibles en 24-48h
  3. MALDITOF, PCR
  4. Test de Elek para toxina –> se pone en contacto con un papel de filtro con Ac, ver si da inmunocomplejos o no
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11
Q

Clostridioides difficile

A

Tiene que ser rápido porque necesita aislamiento. Solo hacer si hay síntomas (diferenciar de colonización)

Muestra: heces diarréicas frescas (nunca sobre heces formes)

  1. Técnicas de referencia: > E y S
    - Ensayos de citotoxicidad: demuestra efecto de toxina B. Requiere
    líneas celulares vivas (es caro), tarda 24-48%
    - Cultivo toxigénico: medios selectivos o cromogénicos (crece de un
    color determinado).
    –> Toxinas: PCR (amplificación gen toxina B). Tarda 2-3 días.

2- Técnicas de rutina: < E y S. En combinación: dx fiable y rápido
- Detección GDH con ELISA: produce mucho durante su crecimiento.
( Si +, ELISA directo para detectar toxinas )
- Detección directa de toxinas: ELISA. A y B o solo A
- PCR directa de las heces –> bacterias, no toxina

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12
Q

C. prefringens

A

Muestra:

  • Piel intacta: punción y aspiración
  • Heridas abiertas: aspiración
  • Gangrena gaseosa: desbridamiento quirúrgico

¡Envío en contenedor para anaerobios!

  1. Tinción de gram: BGP grande, corto y grueso. Generalmente no esporas
  2. Cultivo en agar sangre (24h): halo de doble hemólisis (B-hemólisis interna, A-hemólisis externa)
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13
Q

C. botulinum

A

Clínico:

  • Neuropatía craneal bilateral
  • Parálisis flácida simétrica descendente sin fiebre ni déficits sensitivos
  • No alteración de la consciencia
  • Disfunción respiratoria
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14
Q

C. tetani

A

Clínico:

  • Trismus (cierre mandibular)
  • Risa sardónica
  • Espasmos generalizados
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15
Q

Rickettsia

A
  1. Tinción de Gimenez (gram no es útil). No identifica la especie
  2. PCR con muestra de mancha negra
  3. Serología: IFI
    - Título inicial > 1/80
    - Seroconversión IgG x 4
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16
Q

Sífilis primaria

A

Muestra del borde de la lesión
NO cultivable

  • Microscopía de campo oscuro inmediatamente (muestra muy lábil)
    Solo lesiones genitales (treponemas comensales en TGI y cavidad oral)
  • PCR en lesiones genitales, anales y de la mucosa oral
    No sangre ni LCR