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🔬Histologie > Histologie revue (RT) > Flashcards

Histologie revue (RT) Flashcards

1
Q

Cheminement d’un spécimen:

A
  1. réception
  2. examen macroscopique
  3. traitement
    • circulation
      1. fixation
      2. déshydratation
      3. éclaircissement
      4. imprégnation
    • enrobage
    • copue au microtome
    • étalement et séchage
    • coloration
  4. montage
  5. examen microscopique
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2
Q

Comment peut-on vérifier s’il y a une présence d’eau dans un bain d’alcool:

A

L’eau devient bleu en ajoutant un peu de sulfate anhydre.

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3
Q

Quelle est la méthode de fixation la plus simple:

A

Chaleur

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4
Q

Quels sont les propriétés des fixateurs:

A
  1. Additif : liaison du fixateur avec les protéines
  2. Non additif : la molécule perd son lien intime avec l’eau et devient moins réactive
  3. Coagulant : formation d’un réseau de fibres permettant aux solutions de pénétrer à l’intérieur du tissu
  4. Non coagulant : formation d’un gel. Il en résulte une mauvaise pénétration du tissu par les solutions et l’infiltration à la paraffine et moins efficace
  5. Tolérant : le tissu peut demeurer dans le fixateur pendant une longue période de temps sans causer de dommages au tissu
  6. Non tolérant : le tissu ne peut pas demeurer dans le fixateur plus longtemps que la période recommandé sinon, il y a durcissement excessif du tissu ou rétrécissement du tissu
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5
Q

Vitesse de pénétration des fixateurs, du plus lent au plus vite:

A
  1. formaldéhyde
  2. acide acétique
  3. chlorure mercurique
  4. alcool méthylique
  5. alcool éthylique
  6. tetroxide d’osmium
  7. acide picrique
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6
Q

Quel est le meilleur fixateur:

A

Formol 10%

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7
Q

Quels sont les buts de la fixation;

A
  1. préserver le tissu
  2. prépare les tissus au traitement qui suive (donne une résistance)
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8
Q

Quel est le but de décalcification:

A

Enlever le calcium des tissus.

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9
Q

Quel est le but de la circulation:

A

Préparation du tissu fixé afin de pouvoir l’inclure dans un matériau rigide qui permettra d’en faire des coupes observables.

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10
Q

Quel est le but de la déshydratation:

A

Reltrait de l’eau (et fixateur)

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11
Q

Quel est le but de l’éclaircissement:

A

Retirer l’agent déshydratant pour le remplacer par l’agent éclaircissant (rend le tissu transparent).

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12
Q

Quel est le but de l’imprégnation:

A
  1. retrait complet du xylène et remplacement par la paraffine
  2. fournir un support interne au tissu
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13
Q

Quel est le but de l’enrobage:

A

Fournir un support externe pendant et après la coupe au microtome.

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14
Q

Quels sont les différentes dimensions au microtome:

A
  1. routine: 4um
  2. argent: 2um
  3. rouge congo: 6um
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15
Q

Quel est le but de l’étalement:

A

Aplanir et étirer le tissu avant de le mettre sur la lame.

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16
Q

Quelle doit être la température d’eau d’étalement:

A

46-48oC

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17
Q

Particularités à l’étalement pour l’immunohistochimie:

A
  1. bain pas plus de 40oC
  2. pas ajouter d’adhésif
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18
Q

Attention aux adhésifs pour procédés histochimiques:

A

Pas d’adhésifs protéiques

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19
Q

Attention aux adhésifs pour procédés immunohistochimiques:

A

Pas d’adhésifs protéiques car on recherche des Ag (protéines)

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20
Q

Attention aux adhésifs pour recherches des glucides:

A

Pas d’adhésifs à base d’amidon.

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21
Q

Éléments cellulaire du plus au moins dense:

A
  1. globule rouge
  2. muscle
  3. cytoplasme
  4. collagène
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22
Q

Types de différentiation:

A
  1. différentiation par excès de mordant: par effet de compétition
  2. différentiation par des acides: bris du lien entre le mordant et du tissu
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23
Q

Attention particulière lors de la coloration APS:

A

On ne peut pas utiliser de colle à base d’amidon.

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24
Q

Quel est le seul fixateur qui est non additif:

A

Ethanol

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25
Q

Quel est le seul fixateur qui est intolérant:

A

Éthanol

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26
Q

Quels sont les avantages du fixateur formaldéhyde: (5)

A
  1. moins de rétrécissement
  2. durcit le plus (sauf acétone et éthanol)
  3. peu couteux
  4. versatile au niveau des colorations
  5. pénètre et s’additionne rapidement
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27
Q

Quels sont les désavantages du fixateur formaldéhyde: (2)

A
  1. coloration des éléments non nucléaires
  2. fixe lentement
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28
Q

Quels sont les avantages du fixateur glutaraldéhyde: (2)

A
  1. microscopie électronique
  2. fixe et pénètre en même temps
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29
Q

Quels sont les désavantages du fixateur du glutaraldéhyde: (3)

A
  1. tendance à être intolérant
  2. instable
  3. pénètre pas bien
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30
Q

Quels sont les avantages du fixateur acide acétique: (3)

A
  1. améliore la coloration des éléments nucléaires
  2. bon pour les mucines gastriques
  3. pénètre très vite
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31
Q

Quels sont les désavantages du fixateur acide acétique: (2)

A
  1. gonflement des tissus
  2. globules rouges et hémosidérine lysés donc la technique de Pearl`s est inutile
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32
Q

Quels sont les avantages du fixateur chlorure mercurique: (1)

A
  1. colorations plus belles
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33
Q

Quels sont les désavantages du fixateur chlorure mercurique: (5)

A
  1. toxique
  2. lente pénétration
  3. caude du rétrécissement
  4. cause du durcissement
  5. pigment de mercure
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34
Q

Quels sont les avantages du fixateur tetroxyde d’osmium: (1)

A
  1. le meilleur pour la fixation des lipides
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35
Q

Quels sont les désavantages du fixateur tetroxyde d’osmium: (2)

A
  1. très couteux
  2. pas bon pour la santé
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36
Q

Quels sont les avantages du fixateur acide picrique; (5)

A
  1. fixateur versatile: fixe, mordant, différentie, colore
  2. le seul fixateur a jouer 4 rôles
  3. avantageux de colorer les petits morceaux pour les répérer facilement
  4. décalcifie un peu
  5. bonne coloration avec des colorants acides et trichromiques
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37
Q

Quels sont les désavantages du fixateur acide picrique (7)

A
  1. pas bon pour ADN et ARN
  2. tendance a rétrécir
  3. gonfle les globules rouges
  4. diminue l’hémosidérine
  5. doit éviter les organes hématopoiétiques
  6. fixe mal le rein
  7. pigment d’acide picrique
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38
Q

Quels sont les avantages du fixateur bichromate de potassium: (2)

A
  1. peu couteux
  2. conserve bien les phospholipides
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39
Q

Quels sont les désavantages du fixateur bichromate de potassium: (4)

A
  1. ulcération des mains
  2. destruction des membranes muqueuses
  3. noircissement des solutions avec le temps
  4. pigment de chrome
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40
Q

Quels sont les avantages du fixateur éthanol: (2)

A
  1. ne laisse pas de trace car il ne s’additionne pas
  2. augmente la vitesse de pénétration si ajouté à autre fixateurs
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41
Q

Quels sont les désavantages du fixateur éthanol: (3)

A
  1. durcit et distortion des tissus
  2. tendance à dissoudre les lipides
  3. incompatibilité avec chrome et osmium
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42
Q

Quels sont les avantages du fixateur méthanol: (1)

A
  1. préservation de l’ARN
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43
Q

Quels sont les désavantages du fixateur méthanol: (3)

A
  1. toxique
  2. durcit trop
  3. lipides dissout en partie
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44
Q

Quels sont les avantages du fixateur sulfate de zinc: (4)

A
  1. bon détails de la membrane nucléaire et cytoplasmique
  2. étude immunoenzymatique
  3. bon pour la coloration trichromiques
  4. pourrait remplacer le mercure dans certains mélanges
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45
Q

Quels sont les désavantages du fixateur sulfate de zinc: (1)

A
  1. dépots et précipités: sels de phosphate si zinc entre en contact avec des phosphates
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46
Q

Quel fixateur est surtout utilis/ en microscopie électronique:

A

Glutaraldéhyde

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47
Q

Quel fixateur est surtout utilisé avec des méthodes d’immunofluorescences et immunochimie:

A

Éthanol

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48
Q

Quels sont les ingrédiants dans le mélange fixateur B5:

A
  1. chlorure mercurique
  2. formaldéhyde
  3. acétate de sodium
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49
Q

Quels sont les ingrédiants dans le mélange fixateur Bouin:

A
  1. acide picrique
  2. formol 40%
  3. acide acétique glacial
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50
Q

Quels sont les ingrédiants dans le mélange fixateur Gendre:

A
  1. acide picrique (sous forme d’alcool 95% saturée avec acide picrique)
  2. formol 40%
  3. acide acétique glacial
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51
Q

Quels sont les ingrédiants dans le mélange fixateur Hollande:

A
  1. acétate de cuivre
  2. acide picrique
  3. formol 40%
  4. acide acétique glacial
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52
Q

Quels sont les ingrédiants dans le mélange fixateur Zenker:

A
  1. bichromate de potassium
  2. chlorure mercurique
  3. dans l’eau
  4. plus acide acétique
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53
Q

Quels sont les ingrédiants dans le mélange fixateur Helly (Zenker-formol):

A
  1. bichromate de potassium
  2. chlorure mercurique
  3. dans l’eau
  4. plus fromol 40%
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54
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur B5:

A

Organes hématopoiétiques

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55
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur Bouin:

A
  1. colorations trichromiques
  2. tissus délicats
  3. biopsies gastrointestinales
  4. système endocrinien
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56
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur Gendre:

A
  1. glycogène
  2. hydrates de carbones
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57
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur Hollande:

A

Biopsies du tractus gastrointestinale (mieux que Bouin)

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58
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur Zenker:

A
  1. Foie
  2. rate
  3. tissus de soutient
  4. noyaux
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59
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur Helly:

A
  1. glande hypophyse
  2. organes lymphoides et hématopoiétiques
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60
Q

Quels sont les indications du mélange fixateur Formol-zinc:

A

Tout les tissus

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61
Q

Quels sont les différents décalcifiants utilisés:

A
  1. acide nitrique 5-10%
  2. acide formique 5-10%
  3. acide picrique
  4. résine échangeuse d’ions
  5. électrolyse
  6. agents chélateurs
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62
Q

Quels sont les 3 solvants universels:

A
  1. dioxyde de diéthylène (Dioxane)
  2. butanol tertiaire
  3. tétrahydrofurane ou TFH
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63
Q

Quels sont les désavantages de la paraffine:

A
  1. rétraction du tissu de 10%
  2. ne peut pas utilisé pure
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64
Q

Quels sont les désavantages du carbowax:

A

Ne peut pas être exposé à l’humidité du tout.

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65
Q

Quels sont les avantages du carbowax:

A
  1. peut imprégner directement après la fixation (pas de déshydratation ni d’éclaircissement)
  2. lipides conservés
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66
Q

Quels sont les adhésifs possibles:

A
  1. albumine-glycérol de Mayer
  2. gélatine
  3. lames chargés
  4. colle lepage
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67
Q

Quels sont les désavantages de l’albumine-glycérol de Mayer comme adhésif:

A

Laisse des traces sur le pourtour des lames si pas bien dosé

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68
Q

Quels sont les désavantages de la gélatine comme adhésif:

A
  1. forme une pellicule insoluble
  2. contamination possible par bactéries
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69
Q

Quels sont les désavantages des lames chargés:

A
  1. cout élevé
  2. date d’expiration
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70
Q

Quels sont les avantages de la colle Lepage comme adhésif:

A

Pas de faux positifs ni faux négatifs

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71
Q

Quel est l’origine de l’hématoxyline:

A

Extrait du bois d’un arbre (campêche)

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72
Q

Quels sont les différents hématoxyline aluminiques:

A
  1. Harris (en solution alcoolique)
  2. Mayer (en solution aqueuse)
  3. Ehrlich
  4. Delafield (oxydation naturelle)
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73
Q

Quels sont les différents hématoxyline ferriques:

A
  1. Weigert (en solution alcoolique)
  2. Verhoeff (en solution alcoolique)
  3. Heidenhain
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74
Q

Quel est la couleur des noyaux d’un hématoxyline aluminique:

A

Bleu

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75
Q

Quel est la couleur des noyaux d’un hématoxyline ferrique:

A

Noir

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76
Q

Quelle est la couleur de la laque d’un hématoxyline aluminique:

A

Rouge en milieu acide

Bleu en milieu alcalin

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77
Q

Quelle est la couleur de la laque d’un hématoxyline ferrique:

A

Noir

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78
Q

Quel est le mordant utilisé dans un hématoxyline aluminique:

A

Aluminium (toujours incorporé dans le colorant)

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79
Q

Quel est le mordant utilisé dans un hématoxyline ferrique:

A

Chlorure ferrique (incorporé dans la solution d’hématoxyline avant l’emploi ou faire un bain de mordant et un bain d’hématoxyline)

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80
Q

Quel est l’oxydant utilisé dans un hématoxyline aluminique:

A

Iodate de sodium

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81
Q

Quel est l’oxydant utilisé dans un hématoxyline ferrique:

A

Le même que le mordant (chlorure ferrique)

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82
Q

Quel est le mode d’utilisation de l’hématoxyline aluminique:

A
  • Harris: régressif
  • Mayer: progressif
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83
Q

Quel est le mode d’utilisation de l’hématoxyline ferrique:

A
  • Weigert: progressif
  • Verhoeff: régressif
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84
Q

Quel est le différentiateur dans un hématoxyline aluminique:

A

Alcool-acide

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85
Q

Quel est le différentiateur dans un hématoxyline ferrique:

A
  • Weigert: alcool-acide
  • Verhoeff: le mordant (chlorure ferrique)
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86
Q

Quel est l’utilité de la coloration H&E:

A

Permet de faire la différence entre le cytoplasme, les fibres du tissu conjonctif et les globules rouges en les colorant en différentes tintes de rose.

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87
Q

Quels sont les résultats de la coloration H&E:

A
  1. noyau: bleu
  2. cytoplasme, muscle, tissu conjonctif: différentes tintes de rose
  3. globules rouges: rose, rouge
  4. mucine: peu ou pas coloré
  5. cartilage: mauve
  6. dépots de calcium: bleu foncé
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88
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration H&E:

A
  1. Hématoxyline de Harris
  2. alcool-acide: différentiation
  3. carbonate de lithium 1%: bleuissement
  4. alcool 95%: solvant de l’éosine
  5. éosine: contrecolorant
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89
Q

Quel est l’utilité de la coloration Trichrome de Masson:

A

Différencier le collagène du muscle lisse et du cytoplasme

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90
Q

Quels sont les résultats de la coloration Trichrome de Masson:

A
  1. noyau: marine à noir
  2. cytoplasme: rouge
  3. GR: rouge
  4. fibres musculaires: rouge
  5. collagène: bleu ou vert
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91
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Trichrome de masson:

A

Histologique

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92
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Trichrome de Masson:

A
  1. Acide picrique alcoolique ou Bouin: augmente l’acidophilie
  2. hématéine Weigert: coloration des noyaux (le chlorure ferrique agit comme mordant)
  3. Biebrich écarlate-fuschine acide:
    • biebrich est plus petit et pourra pénétrer dans les structures acidophiles denses (cytoplasme, GR)
    • fuschine acide est plus gros et se fixera sur les structures acidophiles moins denses (muscles et collagène)
  4. acide phosphomolybdique et acide phosphotungstique
    • rôle de différentiateur: vient prendre la place du colorant cytoplasmique dans le tissu par concurrence
    • rôle de mordant :permet au bleu d’aniline de se fixer au collagène
  5. bleu d’aniline: colore le collagène en bleu
  6. vert lumière: colore le collagène en vert
  7. acide acétique 1%: enlève le surplus de bleu d’aniline ou vert lumière des structures
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93
Q

Quel est l’utilité de la coloration Weigert Van Gieson:

A

Différencier le collagène du muscle lisse et du cytoplasme.

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94
Q

Quels sont les résultats de la coloration Weigert Van Giesson:

A
  1. noyau: marine à noir
  2. cytoplasme: jaune
  3. globules rouges: jaune
  4. fibres musculaires: jaune
  5. collagène: rouge
  6. élastine: jaune
  7. calcium: noir
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95
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Weigert Van Gieson:

A

Histologique

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96
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Weigert Van Gieson:

A
  1. Hématoxyline ferrique: coloration des noyaux résistant à l’acide
  2. acide picrique: coloration du cytoplasme et muscle
  3. fuschine acide: coloration du collagène
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97
Q

Quel est l’utilité de la coloration Hématéine de Verhoeff:

A

Différencier les fibres élastiques brutes des autres structures tissulaires.

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98
Q

Quelle est l améthode la plus populaire pour les fibres élastiques:

A

Hématéine de Verhoeff

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99
Q

Quels sont les résultats de la coloration Hématéine de Verhoeff:

A
  1. noyau: marine à noir
  2. cytoplasme: jaune
  3. globules rouges: jaune
  4. fibres musculaires: jaune
  5. collagène: rouge
  6. fibres élastiques: noir
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100
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Hématéine de Verhoeff:

A

Histologique

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101
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Hématéine de Verhoeff:

A
  1. Hématéine de Verhoeff: coloration des fibres élastiques
  2. chlorure ferrique: différentiateur (par excès de mordant)
  3. solution de Van Gieson: contient de l’acide picrique et fuschine acide
  4. thiosulfate de sodium :pour enlever l’excès d’iode sur les lames
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102
Q

Quel est l’utilité de la coloration Fuschine paraldéhyde de Gomori:

A

Différencier les fines fibres élastiques des autres structures tissulaires.

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103
Q

Quels sont les résultats de la coloration Fuschine paraldéhyde de Gomori:

A
  1. noyau: non coloré
  2. cytoplasme: vert
  3. gloubles rouges: vert
  4. fibres musculaires: vert
  5. collagène: vert
  6. fibres élastiques: bleu foncé a violet
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104
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Fuschine paraldéhyde de Gomori:

A

Histologique

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105
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Fuschine paraldéhyde de Gomori:

A
  1. Permanganate de K 1%: intensifie la coloration par oxydation
  2. acide oxalique 1%: enlever le surplus de permangate de K
  3. aldéhyde fuschine de Gomori: coloration des fibres élastiques
  4. vert lumière: contre colorant
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106
Q

Quel est l’utilité de la coloration APS:

A
  1. Mise en évidence des polysaccharides, des mucosubstances neutres et des membranes basales
  2. démonstration du glycogène (APS diastase)
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107
Q

Quels sont les désavantages de la coloration APS:

A

Le glutaraldéhyde donne des faux postiifs.

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108
Q

Quels sont les résultats de la coloration APS:

A
  1. glycogène:
    • APS positif: magenta
    • APS diastase: non coloré
  2. membrane basale: magenta
  3. noyau: bleu pâle
  4. cytoplasme, GR: bleu pâle
  5. mucines acides: incolore à magenta
  6. fungi: magenta
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109
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration APS:

A

Histochimique

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110
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration APS:

A
  1. acide périodique: oxydation des groupes glucidiques pour former des aldéhydes
  2. réactif de Schiff (fuschine basique): le réactif de Schiff est un colorant dont le chromophore est détruit
  3. hématoxyline: contrecolorant
  4. diastase: enzyme digestive, qui digère le glycogène
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111
Q

Quel est l’utilité de la coloration Bleu alcian pH 2.5

A

Démonstration des mucopolysaccharides acides et des glycoprotéines, les deux sufatés et carboxylés.

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112
Q

Quels sont les résultats de la coloration Bleu alcian pH 2.5:

A
  1. mucines: turquoise
  2. autres structures: rose
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113
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Bleu alcian pH 2.5:

A

Histologique

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114
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Bleu alcian pH 2.5:

A
  1. bleu alcian à pH 2.5 en solution d’acide acétique 3%: colore les mucopolysaccharides acides sulfatés et carboxylés et glycoprotéines sulfatés et carboxylés
  2. Kernechtrot: contrecolorant
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115
Q

Quel est l’utilité de la coloration Bleu alcian pH 1.0:

A
  1. mucopolysaccharides acides sulfatés
  2. glycoprotéines sulfatés
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116
Q

Quels sont les résultats de la coloration Bleu alcian pH 1.0:

A
  1. mucines acides sulfatés: turquoise
  2. autres structures: rose
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117
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Bleu alcian pH 1.0:

A

Histologique

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118
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Bleu alcian pH 1.0:

A
  1. bleu alcian pH 1.0 en solution d’HCl 0.1M: colore les mucopolysaccharides acides sulfatés et glycoprotéines sulfatés
  2. Kernechtrot: contrecolorant
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119
Q

Quel est l’utilité de la coloration Bleu alcian - APS:

A

Différencier les mucosubstances neutres des mucosubstances acides.

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120
Q

Quels sont les résultats de la coloration Bleu alcian - APS:

A
  1. polysaccharides neutres: magenta
  2. mucosubstances strictement acides: bleu
  3. autres substances: teintes de rose
  4. mucnes neutres: magenta
  5. mucus dans les cellules caliciformes du petit intestin:
    • 2.5: bleu
    • 1.0: magenta
  6. mucus dans les cellules caliciformes du gros intestin: bleu
  7. glycogène: magenta
  8. membrane basale: magenta
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121
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration bleu alcian - APS:

A

Histochimique et histologique

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122
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration bleu alcian - APS:

A
  1. bleu alcian à pH 2.5 en solution d’acide acétique 3%: colore les mucopolysaccharides acides sulfatés et carboxylés et les glycoprotéines sulfatés et carboxylés
  2. réactif de Schiff: colore les mucosubstances neutres
  3. éosine ou Kernechtrot: contrecolorant
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123
Q

Quel est l’utilité de la coloration Mayer Mucicarmine:

A

Mise en évidence des mucines épithéliales acides

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124
Q

Quels sont les résultats de la coloration Mayer mucicarmine:

A
  1. mucines acides: rose foncé à rouge
  2. capsules du Cryptococcus: rose foncé à rouge
  3. noyaux: noir
  4. autres éléments tissulaires: bleu ou jaune
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125
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Mayer mucicarmine:

A

Histochimique

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126
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Mayer mucicarmine:

A
  1. Solution de travail Muci-Carmin: mise en évidence des mucines
  2. hématoxyline de Weigert: coloration des noyaux
  3. solution de Métanil jaune 0.25%: contrecolorant
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127
Q

Quel est l’utilité de la coloration Réticuline de Gomori:

A

Différencier les fibres de réticuline des autres éléments du tissu.

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128
Q

Quels sont les résultats de la coloration Réticuline de Gomori:

A
  1. noyau: rouge
  2. cytoplasme: rouge
  3. globules rouges: rouge
  4. fibres musculaires: rouge
  5. collagène: gris
  6. fibres de réticuline: noir
  7. membrane basale: noir
129
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Réticuline de Gomori:

A

Imprégnation métallique

130
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Réticuline de Gomori:

A
  1. permanganate de K 1%: oxydation
  2. métabisulfite de K 2% ou acide oxyalique 1%: blanchiement
  3. chlorure d’ammonium ferrique 2%: sensibilisation
  4. solution de travail de nitrate d’argent: imprégnation
  5. formaline 20%: réducteur
  6. chlorure d’or 0.2%: virage
  7. métabisulfite de K 2%: arrêt du virage
  8. thiosulfate de sodium 2%: réduction (fixage)
  9. nuclear fast red: contrecolorant
131
Q

Quel est l’utilité de la coloration Gram:

A

Démonstration des bactéries dans les tissus

132
Q

Quels sont les résultats de la coloration Gram:

A
  1. bactéries Gram positif: bleu-violet
  2. bactéries Gram négatif: rouge
  3. noyau: rouge
  4. fond: jaune
133
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Gram :

A

Histologiqued

134
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Gram:

A
  1. Violet de cristal:
    • Gram positif: paroi est coloré en bleu violet
    • Gram négatif: idem
  2. iode de Gram:
    • Gram positif: violet de cristal est renforcé
    • Gram négatif: idem
  3. éther-acétone:
    • Gram positif: resserrement des pores, le complexe violet de cristal-diode est retenu
    • Gram négatif: dissolution des lipides, le complexe violet de cristal-iode est extrait
  4. fuschine basique:
    • Gram positif: complexe d’iode-violet de cristal masque l’action de la fuschine basique
    • Gram négatif: la fuschine basique colore les bactéries en rouge
  5. acide picrique-acétone:
    • Gram positif: enlève le surplus de colorant sur les tissus et contrecolorer les éléments acidophiles en jaune
    • Gram négatif: idem
135
Q

Quel est l’utilité de la coloration Ziehl-Neelsen:

A

Démonstration des bactéries alcido-alcoolo-résistantes dans les tissus.

136
Q

Quels sont les résultats de la coloration Ziehl-Neelsen:

A
  1. bactéries acido-alcoolo-résistantes: rouge
  2. GR: orange
  3. noyaux: bleu
  4. fond: bleu
137
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Ziehl-Neelson:

A

Histologique

138
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Ziehl-Neelson:

A
  1. Fuschine carbolique à froid: colore les bactéries acido-alcoolo-résistantes
  2. alcool-acide: différentiation. retrait du colorant de toutes les bactéries qui ne possèdent pas de parois cireuses
  3. bleu de méthylène ou hématoxyline de Harris: contrecoloration
139
Q

Quel est l’utilité de la coloration Warthin-Starry:

A

Démonstration des spirochètes dans les tissus

140
Q

Quels sont les résultats de la coloration Warthin-Starry:

A
  1. spirochètes: noir
  2. autres bactéries: noir
  3. fond: jaune pâle à brun pâle
141
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Warthin-Starry:

A

Imprégnation argyrophile

142
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Warthin-Starry:

A
  1. solution de nitrate d’argent: imprégnation (formation de complexes organo-métalliques)
  2. solution de nitrate d’argent-hydroquinone gélatinisée: Développeur. L’hydroquinon a deux rôles
    • agent réducteur: permet à l’argent de se déposer sur les complexes organo-métalliques
    • agent de développement: augmente la vitesse de transformation de l’argent ionique en argent métallique et empêche la reconversion
143
Q

Quel est l’utilité de la coloration Grocott:

A

Démonstration des mycoses dans les tissus.

144
Q

Quels sont les résultats de la coloration Grocott:

A
  1. contour des champignons: noir
  2. partie interne des champignons, levures: gris
  3. fond: vert
  4. mucines, glycogène, mélanine: noir
145
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Grocott:

A

Imprégnation métallique

146
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Grocott:

A
  1. acide chromique 5%: oxydation et production d’aldéhydes
  2. métabisulfite de sodium 1%: blanchiment, retire l’acide chromique résiduel
  3. solution de méthénamine d’argent: imprégnation
  4. chlorure d’or 0.1%: virage
  5. thiosulfate de sodium 2%: réduction (fixage)
  6. vert lumière: contrecoloration
147
Q

Quel est l’utilité de la coloration APS fungi:

A

Mise en évidence des champignons.

148
Q

Quels sont les résultats de la coloration APS fungi:

A
  1. mycoses: rose, magenta
  2. fond: vert
149
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration APS fungi:

A

Histochimique

150
Q

Quel est l’utilité de la coloration May-Grunwald Giemsa:

A
  1. démonstration des bactéries, rickettsies et toxoplasma gondii
  2. utilisé pour la différentiation des cellules présentes dans le tissu hématopoiétique
151
Q

Quels sont les résultats de la coloration May-Grunwald Giemsa:

A
  1. bactéries: bleu
  2. noyau: bleu
  3. cytoplasme des leucocytes: rose, gris, bleu
152
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration May-Grunwald Giemsa:

A

Histologique

153
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration May-Grunwald-Giemsa:

A
  1. solution de travail de Jenner
  2. solution de travail de Giemsa
  3. acide acétique 1%: différentiation
154
Q

Quel est l’utilité de la coloration Bleu de Prusse:

A

Mise en évidence du fer ferrique (Fe+++) dans les tissus.

155
Q

Quels sont les résultats de la coloration Bleu de Pruse:

A
  1. noyau, cytoplasme, GR: rose
  2. collagène, muscle: rose
  3. fer ferrique, hémosidérine: bleu
156
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Bleu de Prusse:

A

Histochimique

157
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Bleu de Prusse:

A
  1. solution de ferrocyanure de K + HCl: le HCl libère le fer de l’hémosidérine
  2. Kernechtrot: contrecolorant
158
Q

Quel est l’utilité de la coloration Bleu de Turnbull:

A

Mise en évidence du fer ferreux (Fe++) dans les tissus.

159
Q

Quels sont les résultats de la coloration Bleu de Turnbull:

A
  1. noyau, ctyoplasme, GR: rose
  2. collagène, muscle: rose
  3. fer ferreux: bleu
160
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Bleu de Turnbull:

A

Histochimique

161
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Bleu de Turnbull:

A
  1. solution de ferricyanure de K + HCl: réagit avec les ions ferreux libres dans le tissu
  2. Kernechtrot: contrecolorant
162
Q

Quel est l’utilité de la coloration Masson-Fontana:

A

Démonstration des substances argentaffines.

163
Q

Quels sont les résultats de la coloration Masson-Fontana:

A
  1. noyau: rose
  2. mélanine: noir
  3. granules argentaffines: noir
164
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Masson-Fontana:

A

Imprégnation métallique

165
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Masson-Fontana:

A
  1. solution d’argent de Fontana: imprégnation
  2. chlorure d’or 0.2%: virage
  3. thiosulfate de sodium 5%: réduction (fixage)
  4. nuclear fast red ou éosine: contrecolorant
166
Q

Quel est l’utilité de la coloration Schmorls:

A

Mise en évidence des substances réductrices présentes dans les tissus.

167
Q

Quels sont les résultats de la coloration Schmorls:

A
  1. noyau: rose
  2. mélanine: bleu
  3. granules argentaffines: bleu
168
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Schmorls:

A

Histochimiques

169
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Schmorls:

A
  1. solution ferricyanure de potassium et chlorure ferrique: coloration
  2. Kernechtrot ou éosine: contrecolorant
170
Q

Quel est l’utilité de la coloration Méthénamine d’argent de Gomori:

A

Démonstration des urates dans les tissus

171
Q

Quels sont les résultats de la coloration Méthénamine d’argent de Gomori:

A
  1. urate: noir
  2. fond: vert
  3. calcium: noir
172
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Méthénamine d’argent de Gomori:

A

Imprégnation métallique

173
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Méthénamine d’argent de Gomori:

A
  1. méthénamine d’argnet + borax 5%: imprégnation
  2. thiosulfate de sodium 2%: réduction (fixage)
  3. vert lumière: contrecoloration
174
Q

Quel est l’utilité de la coloration Fouchet:

A

Démonstration de la bilirubine dans les tissus.

175
Q

Quels sont les résultats de la coloration Fouchet:

A
  1. bile ou bilirubine: vert
  2. fond: jaune
176
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Fouchet:

A

Histochimique

177
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Fouchet:

A
  1. réactif de Fouchet: oxydation de la bilirubine en biliverdine
    • chlorure ferrique 10%
    • acide trichloroacétique
    • eau distillée
  2. solution de Van Gieson: contrecolorant
178
Q

Quel est l’utilité de la coloration Von Kossa:

A

démonstration de la présence de calcium dans les tissus.

179
Q

Quels sont les résultats de la coloration Von Kossa:

A
  1. sels de calcium: noir
  2. fond: rouge
180
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Von Kossa:

A

Imprégnation métallique argyrophile

181
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Von Kossa:

A
  1. nitrate d’argent 5%: imprégnation métallique
  2. thiosulfate de sodium: enlève l’argent non réduit
  3. rouge neutre 1% ou autre: contrecolorant
182
Q

Quel est l’utilité de la coloration Rhodamine:

A

Démonstration du cuivre dans les tissus, surtout dans le foie (maladie de Wilson)

183
Q

Quels sont les résultats de la coloration Rhodamine:

A
  1. cuivre: rouge
  2. noyau: bleu pâle
184
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Rhodamine:

A

Histochimique

185
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Rhodamine:

A
  1. solution de Rhodamine: mise en évidence du cuivre
  2. hématoxyline de Mayer: contrecolorant
186
Q

Quel est l’utilité de la coloration Bleu de toluidine:

A

Démonstration des mastocytes dans les tissus.

187
Q

Quels sont les résultats de la coloration Bleu de toluidine:

A
  1. granulation des mastocytes: violet foncé
  2. fond: bleu
188
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration Bleu de toluidine:

A

Métachromasie

189
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration Bleu de toluidine:

A
  1. solution de bleu de Toluidine: colore tout les éléments
190
Q

Quel est le mécanisme en cause de la coloration ABC:

A

Immunohistochimique

191
Q

Quels sont les réactifs et leur rôles dans la coloration ABC:

A
  1. traitement des lames avec H2O2 + méthanol: procédure de blocage no 1. Blocage de l’activité endogène de la peroxydase.
  2. solution protéique de blocage: procédure du blocage no 2. Blocage des sites chargés pour ne pas que les anticorps s’y fixent.
  3. anticorps primaire: spécifique à l’antigène recherché
  4. anticorps secondaire: conjugé à la biotine
  5. réactif ABC: complexe avidine-biotine couplé a un enzyme (peroxydase)
  6. DAB: formation d’un complexe coloré
  7. hématoxyline de Mayer: contrecoloration
192
Q

Rétrécissement ou gonflement du tissu est quel type d’artéfact:

A

De fixation

193
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Rétrécissement ou gonflement du tissu:

A

Lors de l’utilisation d’un fixateur intolérent pendant une période de temps trop longue.

194
Q

Comment éviter l’artéfact Rétrécissement ou gonflement du tissu:

A
  1. ne pas dépasser la période de temps idéale de la fixation
  2. choisir un fixateur tolérant
  3. choisir un fixateur composé ayant un ingrédient qui contrecarre l’intolérance
195
Q

Desquamation est quel type d’artéfact:

A

De fixation

196
Q

Cytolyse et autolyse est quel type d’artéfact:

A

De fixation

197
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Cytolyse et autolyse:

A

Nécrose du tissu si la fixation a débuté tardivement.

198
Q

Comment éviter l’artéfact Cytolyse et autolyse:

A
  1. plonger le tissu dans le fixateur aussitôt que possible après le prélèvement
  2. s’assurer que le liquide fixateur est en contact avec toute la surface du tissu
199
Q

Polarisation du glycogène ou effet de fuite est quel type d’artéfact:

A

De fixation

200
Q

Comment éviter l’artéfact Polarisation du glycogène ou effet de fuite:

A

Utiliser un fixateur adéquat pour le glycogène forsque celui-ci doit être bien préservé.

201
Q

Fixation par couche est quel type d’artéfact:

A

De fixation

202
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Fixation par couche:

A

Ralentissement de la vitesse de pénétration du liquide fixateur dans le tissu, le centre du tissu est donc mal ou pas fixé.

203
Q

Comment éviter l’artéfact Fixation par couche:

A
  1. utiliser un fixateur à pénétration plus rapide
  2. utiliser des pièces de tissu très mince
204
Q

Perte de structures ou de détails est quel type d’artéfact:

A

De fixation

205
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Perte de structures ou de détails:

A

Fixation trop courte du tissu, les éléments non fixés seront abimés lors de la circulation et lors des manipulations suivantes.

206
Q

Comment éviter l’artéfact Perte de structures ou de détails:

A
  1. allonger la période de fixation en tenant compte de la grosseur du tissu
  2. s’assurer que le tissu congèle le plus rapidement possible car une congélation trop lente cause la formation de cristaux de glace
207
Q

Pigment de formol est quel type d’artéfact:

A

Pigment

208
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact pigment de formol:

A

Pigment brun à noir, biréfringent

209
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Pigment de formol:

A

L’acide formique non tamponné + hémoglobine

210
Q

Comment éviter l’artéfact Pigment de formol:

A

Utiliser du formaldéhyde tamponné.

211
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Pigment de formol:

A

Laver la lame dans une solution alcoolique saturée d’acide picrique.

212
Q

Pigment de mercure est quel type d’artéfact:

A

Pigment

213
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Pigment de mercure:

A

Brun, noir ou brun-noir, non biréfringent.

214
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Pigment de mercure:

A

Appariat avec tous les fixateurs ayant du mercure.

215
Q

Comment éviter l’artéfact Pigment de mercure:

A

Éviter les fixateurs ayant du mercure.

216
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Pigment de mercure:

A

Iode alcoolique (enleveur) + thiosulfate de sodium (enlève l’iode).

217
Q

Pigment de chrome est quel type d’artéfact:

A

Pigment

218
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Pigment de chrome:

A

Rouille, orange, brun, noir

219
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Pigment de chrome:

A

Chrome + alcool (du bain) donne un oxyde insoluble.

220
Q

Comment éviter l’artéfact Pigment de chrome:

A

Éviter les fixateurs à base de chrome.

221
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Pigment de chrome:

A
  1. lavage du tissu à l’eau courante (pendant la nuit)
  2. passer les coupes dans un bain d’alcool-acide au moment de la coloration
222
Q

Pigment d’acide carbonique est quel type d’artéfact:

A

Pigment

223
Q

Comment éviter l’artéfact Pigment d’acide picrique:

A

Éviter l’utilisation de l’acide picrique.

224
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Pigment d’acide picrique:

A
  1. blanchissement du tissu avec du thiosulfate de sodium 2.5%
  2. blanchissement du tissu avec du carbonate de lithium 1%
225
Q

Pigment de carbone est quel type d’artéfact:

A

Pigment

226
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Pigment de carbone:

A

Brun-noir, non réfringent

227
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Pigment de carbone:

A

Retrouvé dans les poumons des citadins ou causé par des tattoo.

228
Q

Précipité dans la chambre et les tubulures du circulateur est quel type d’artéfact:

A

Circulation

229
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Précipité dans la chambre et les tubulures du circulateur:

A
  1. utilisation de formol-zinc ou formol tamponné avec phosphate et déshydratation débutée avec alcool plus de 70%
  2. pH formol-zinc plus de 7
230
Q

Comment éviter l’artéfact Précipité dans la chambre et les tubulures du circulateur:

A
  1. débuter la déshydratation avec alcool 70%
  2. pH formol-zinc doit demeurer sous 7
231
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Précipité dans la chambre et les tubulures du circulateur:

A

Retrait du précipité en rincant la chambre et tubulures avec acide acétique 5%.

232
Q

Déshydratation excessive est quel type d’artéfact:

A

Circulation

233
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Déshydratation excessive:

A

Sous forme de microchatter sur les bords du tissu.

234
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Déshydratation excessive:

A

Trop longtemps dans les bains de déshydratations.

235
Q

Comment éviter l’artéfact Déshydratation excessive:

A
  1. circuler la biopsie séparément
  2. diminuer le temps de déshydratation
236
Q

Circulation inadéquate est quel type d’artéfact:

A

Circulation

237
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Circulation inadéquate:

A

Coloration nucléaire pauvre ou absence de coloration de certains noyaux.

238
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Circulation inadéquate:

A
  1. reste de l’eau dans les tissus quand il va dans l’éclarcissement
  2. présence d’agent éclaircissement dans la paraffine (odeur xylène)
  3. utilisation trop de chaleur pendant le cycle
  4. problèmes mécaniques avec le circulateur
239
Q

Comment éviter l’artéfact Circulation inadéquate:

A
  1. s’assurer d’aucune condensation dans le circulateur
  2. s’assurer que l’alcool du dernier bain est 100% pur
  3. s’assurer qu’il n’y a pas de problèmes mécaniques
  4. s’assurer d’une cédule adéquate
  5. chaleur seulement pour la paraffine
240
Q

Artéfact d’éponge est quel type d’artéfact:

A

Circulation

241
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Artéfact d’éponge:

A

Utilisation des éponges donc trop de pression sur le tissu.

242
Q

Comment éviter l’artéfact d’éponge:

A

S’assurer de tremper les éponges dans le fixateur avant de mettre le fragment.

243
Q

Dessiccation accidentel du tissu est quel type d’artéfact:

A

Circulation

244
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Dessiccation accidentel du tissu:

A

Tissu laissé à l’air libre pendant la circulation.

245
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Dessication accidentel du tissu:

A
  1. enlever le plus de paraffine possible
  2. placer le tissu dans une solution réhydratante: eau, carbonate sodium aqueux
246
Q

Tissu d’apparence molle est quel type d’artéfact:

A

Enrobage

247
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Tissu d’apparence molle:

A
  1. sections trop épaisses à la salle de coupe
  2. compression entre le dessus et dessous de la cassette, les liquides ne pénètrent pas tout le tissu
248
Q

Comment éviter l’artéfact Tissu d’apparence molle:

A
  1. s’assurer que le tissu est coupé mince à la salle de coupe
  2. s’assurer que le tissu est bien fixé
  3. s’assurer qu’il n’y a pas de problème mécanique avec le circulateur
249
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Tissu d’apparence molle:

A
  1. fondre paraffine
  2. mettre tissu dans circulateur
  3. démarrer procédure de nettoyage du circulateur
  4. passer manuellement dans alcool 95 et 70%
  5. mettre dans formol
  6. circuler avec prochaine batch
250
Q

Trous dans la section est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

251
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Trous dans la section:

A
  1. attaque du bloc trop aggressive
  2. déshydratation excessive
  3. air restant dans le tissu lors de l’imprégnation
  4. imprégnation incomplète du tissu ou circulation
252
Q

Comment éviter l’artéfact Trous dans la section:

A
  1. attaquer le bloc plus doucement lors du rabotage
  2. tremper le bloc brièvement dans un bain d’eau glacé
  3. ré-imprégner le tissu
  4. ré-imprégner ou re-circuler si le problème est trop sérieux
253
Q

Il ne se forme pas de ruban est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

254
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Il ne se forme pas de ruban:

A
  1. couteau émoussé
  2. paraffine trop dure
  3. angle de dégagement trop grand
  4. température de la pièce trop basse
  5. débris sur le couteau
255
Q

Comment éviter l’artéfact Il ne se forme pas de ruban:

A
  1. déplacer ou changer le couteau
  2. ré-inclure dans une paraffine ayant un point de fusion plus bas
  3. ajuster l’angle de dégagement
  4. ajuster la température de la pièce
  5. nettoyer la lame avec un peu de xylène ou autre produit
256
Q

Les sections adhèrent au bloc lors de la remontée du bloc est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

257
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Les sections adhèrent au bloc lors de la remontée du bloc.

A
  1. couteau émoussé
  2. angle de dégagement trop faible
  3. température de la pièce trop élevée
  4. paraffine trop molle
258
Q

Comment éviter l’artéfact Les sections adhèrent au bloc lors de la remontée du bloc:

A
  1. déplacer ou changer le couteau
  2. augmenter l’angle de dégagement
  3. ajuster la température de la pièce
  4. utiliser une paraffine plus dure
259
Q

Présence d’ondulations sur la coupe est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

260
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Présence d’ondulations sur la coupe:

A
  1. couteau ou bloc pas serré
  2. pièces du microtome trop usées
  3. manche du microtome sortie à son maximum
  4. angle de dégagement trop grand
261
Q

Comment éviter l’artéfact présence d’ondulations sur la coupe:

A
  1. serrer le bloc ou la lame
  2. changer les pièces usées
  3. rentrer la manche du microtome
  4. réduire l’angle de dégagement
262
Q

Chatter microscopique est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

263
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Chatter microscopique:

A
  1. tissus trop déshydraté
  2. manque d’humidité dans le tissu
  3. couteau émoussé
  4. angle de dégagement trop grand
  5. coupe trop rapide
264
Q

Comment éviter l’artéfact Chatter microscopique:

A
  1. vérifier la cédule de l’appareil à circulation
  2. rétablir l’humidité du tissu en exposant la surface du bloc par rabotage et en le mettant sur une surface d’eau glacée
  3. changer le couteau
  4. réduire l’angle de dégagement
  5. réduire la vitesse de coupe
265
Q

Les sections alternent entre épaisses et minces, course à vide est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

266
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Les sections alternent entre épaisses et minces, course à vide:

A
  1. angle de dégagement trop petit
  2. défaut dans le mécanisme du microtome
267
Q

Comment éviter l’artéfact Les sections alternent entre épaisses et minces, course à vide:

A
  1. augmenter légèrement l’angle de dégagement
  2. vérifier le fonctionnement du mécanisme
268
Q

Les sections sont excessivement comprimées: est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

269
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Les sections sont excessivement comprimées:

A
  1. couteau émoussé
  2. couteau avec débris de paraffine
  3. paraffine derrière le couteau ou le porte-couteau
  4. angle de dégagement trop faible
  5. coupe trop rapide
  6. température ambiante trop élevée
270
Q

Comment éviter l’artéfact Les sections sont excessivement comprimés:

A
  1. déplacer ou changer le couteau
  2. nettoyer le couteau
  3. nettoyer le tout
  4. augmenter l’angle de dégagement
  5. plus lentement
  6. diminuer la température
271
Q

Présence de stries: est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

272
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Présence de stries:

A
  1. couteau encoché à un endroit
  2. particules dures dans le tissu ou dans la paraffine
273
Q

Comment éviter l’artéfact Présence de stries:

A
  1. déplacer ou changer le couteau
  2. décalcifier pour retirer le calcium du tissu
274
Q

Les sections s’envolent et se collent aux objets ou aux autres parties du microtome est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

275
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Les sections s’envolent et se collent aux objets ou aux autres parties du microtome:

A

Électricité statique

276
Q

Comment éviter l’artéfact Les sections s’envolent et se colletn aux objets ou aux autres parties du microtome:

A
  1. humidifier l’air en soufflant sur le bloc et sur le couteau lors de la coupe
  2. faire bouillir de l’eau près du microtome
  3. mise à terre du microtome
  4. ioniser l’air
277
Q

Les sections s’enroulent au lieu de rester à plat sur le couteau est quel type d’artéfact:

A

Microtomie

278
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Les sections s’enroulent au lieu de rester à plat sur le couteau:

A
  1. couteau émoussé
  2. angle de dégagement trop grand
  3. épaisseur des sections trop grande pour le type de paraffine
279
Q

Comment éviter l’artéfact Les sections s’enroulent au lieu de rester à plat sur le couteau:

A
  1. déplacer ou changer le couteau
  2. réduire l’inclinaison du couteau si l’angle de dégagement est excessif
  3. réduire l’épaisseur des sections
280
Q

Déparaffinage non complété est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

281
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Déparaffinage non complété

A

Des taches ou zones blanches peuvent être observés.

282
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Déparaffinage non complété:

A
  1. eau ayant resté dans le tissu par un séchage incomplet
  2. eau ayant resté dans le tissu par un séjour trop court dans les bains de xylène lors du déparaffinage
283
Q

Comment éviter l’artéfact Déparaffinage non complété:

A
  1. bien assécher les sections avant le déparaffinage
  2. laissser suffisamment longtemps dans le xylène lors du déparaffinage
  3. éviter l’utilisation du xylène contaminé
284
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Déparaffinage non complété:

A
  1. traiter les sections avec alcool absolue pour retirer l’eau et traiter de nouveau au xylène pour reitrer la paraffine
  2. si les coupes on été colorés, traiter et recolorer
285
Q

Le manque de détails nucléaires est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

286
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Manque de détails nucléaires:

A

Pratiquement impossible d’observer les différentes motifs de la chromatine dans le noyau.

287
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Manque de détails nucléaires:

A
  1. une fixation incomplète est la cause principale
  2. une chaleur excessive lors de la circulation des tissus ou lors du séchage des coupes
288
Q

Comment éviter l’artéfact Manque de détails nucléaires:

A
  1. fixer les tissus complètement
  2. déshydratation et éclaircissement complète du tissu avant imprégnation
  3. chaleur seulement pour paraffine
  4. ne pas laisser le tissu dans la paraffine fondue pour une période de temps prolongée
  5. assécher les coupes à une tepérature convenable
289
Q

Noyaux colorés trop pâle est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

290
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Noyaux colorés trop pâle:

A
  1. un séjour trop court dans la solution d’hématoxyline
  2. utiliser une solution d’hématoxyline suroxydée ou expiré
  3. trop de différentiation de l’hématoxyline
  4. dans une section d’os peut être le résultat d’un décalcification excessive
291
Q

Comment éviter l’artéfact Noyaux colorés trop pâle:

A
  1. laisser les coupes suffisament longtemps dans l’hématoxyline
  2. attention à la suroxydation ou l’expiration de l’hématoxyline
  3. respecter le temps de différentiation des noyaux
292
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Noyaux colorés trop pâle:

A
  1. si le tissu a été fixé avec un fixateur très acide, trop décalcifié ou trop longtemps dans le fixateur, on peut augmenter le séjour dans l’hématoxyline
  2. recolorer les coupes après avoir identifié le problème
293
Q

Noyaux colorés trop foncé est quel type d’artéfact:

A

H&E

294
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Noyaux colorés trop foncés

A
  1. séjour trop long dans la solution d’hématoxyline
  2. sections trop épaisses
  3. différentiation de l’héamtoxyline insuffisante
295
Q

Comment éviter l’artéfact Noyaux colorés trop foncé:

A
  1. s’assurer de la bonne épaisseur de la section
  2. s’assurer du bon temps dans l’hématoxyline
  3. s’assurer du bon temps de différentiation
296
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Noyaux colorés trop foncé:

A

Si la section n’est pas trop épaisse, décolorer et recolorer en s’assurant ou ajustant les temps dans l’hématoxyline et de différentiation.

297
Q

Noyau de couleur rouge ou rouge-brun est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

298
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Noyau de couleur rouge ou rouge-brun:

A
  1. la solution d’hématoxyline est sur le point de ne plus être bonne
  2. l’étape de bleuissement des noyaux n’a pas été effectuée correctement
299
Q

Comment éviter l’artéfact Noyau de couleur rouge ou rouge-brun:

A

S’assurer d’un bon bleuissement des noyaux.

300
Q

Cytoplasme coloré trop pâle est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

301
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Cytoplasme coloré trop pâle:

A
  1. augmentation du pH de l’éosine au-dessus de 5
    • contamination par l’agent de bleuissement
    • éosine qui n’a pas été acidifié
  2. section trop mince
  3. séjour trop long dans l’alcool dilué suivant l’éosine
302
Q

Comment éviter l’artéfact Ctyoplasme coloré trop pâle:

A
  1. rincer les coupes après l’agent de bleuissement
  2. acidifier l’éosine
  3. s’assurer d’une bonne épaisseur des coupes
  4. s’assurer que le séjour dans les alcools à basse concentration suivant l’éosine ne soit pas trop long. PLus il y a d’eau dans ces solutions d’alcool, plus il y aura d’éosine enlevé
303
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Cytoplasme coloré trop pâle:

A

Décolorer les coupes et recolorer en y apportant les corrections.

304
Q

Éosine incorrectement différencié est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

305
Q

Quelle est la descritpion de l’artéfact Éosine incorrectement différencié:

A

Trois teintes de rose non apparentes.

306
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Éosine incorrectement différencié:

A
  1. mauvaise fixation
  2. déshydratation et éclaicissement inadéquat
  3. différenciation de l’éosine inadéquat
  4. pas un bon pH de l’éosine
307
Q

Comment éviter l’artéfact Éosine incorrectement différencié:

A
  1. s’assurer que la fixation est adéquate et complète
  2. s’assurer que la déshydratation et éclaircissement sont adéquats lors de la circulation
  3. séjour adéquat dans le différentiateur
  4. le pH de l’éosine est adéquat
308
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Éosine incorrectement différencié:

A

Décolorer et recolorer si possible.

309
Q

Précipités bleu noir sur les sections est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

310
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Précipités bleu noir sur les sections:

A

La mince couche métallique qui se développe sur la plupart des hématoxyline a été ramassée par la lame lors de la coloration.

311
Q

Comment éviter l’artéfact Précippités bleu noir sur les sections:

A

Filtrer l’hématoxyline tous les jours avant l’utilisation.

312
Q

Eau et coupes d’aspect brumeux ou laiteux est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

313
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Eau et coupes d’aspect brumeux ou laiteux:

A

Présence de xylène sur les coupes et dans le bain d’eau.

314
Q

Comment éviter l’artéfact Eau et coupes d’aspect brumeux ou laiteux:

A

Bonne rotation des bains d’alcool.

315
Q

Comment se débarasser de l’artéfact Eau et coupes d’aspect brumeux ou laiteux:

A

Remonter les étapes en changeant les bains d’alcool et en reprenant les étapes des bains d’alcool jusqu’au bain d’eau.

316
Q

Coloration H&E irrégulière est quel type d’artéfact:

A

Coloration H&E

317
Q

Quelle est la cause de l’artéfact Coloration H&E irrégulière:

A
  1. présence d’eau ou de liquide fixateur dans la paraffine lors de l’imprégnation
  2. contamination des réactifs dans un appariel à circulation du type fermée
  3. absorption d’eau présente dans l’atmosphère par les alcools servant à la déshydratation dans le cas d’un appareil à circulation du type ouvert
  4. si le niveau des solutions ne parvient pas à recouvrir toute la surface de la lame
318
Q

Comment éviter l’artéfact Coloration H&E irrégulière:

A

Utiliser le toluène au lieu du xylène dans les zones où le taux d’humidité est élevé dans les appareils à circulation de type ouvert.

319
Q
A

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