Laboratoires Flashcards

(50 cards)

1
Q

Transformation bactérienne

A

C’est une technique qui permet d’introduire de l’ADN exogène, comme un plasmide, dans une bactérie afin de modifier son patrimoine génétique. Cela permet notamment de lui conférer des propriétés nouvelles, comme la résistance à un antibiotique ou la capacité à produire une protéine spécifique.

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2
Q

Bactérie compétente

A

Les bactéries deviennent compétentes après un traitement chimique (par ex. CaCl₂), ce qui rend leur membrane cellulaire plus perméable à l’ADN. Cela permet au plasmide d’entrer plus facilement lors de la transformation.

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3
Q

Rôle du choc thermique

A

Le choc thermique crée un stress soudain qui provoque une réorganisation transitoire de la membrane plasmique, permettant au plasmide de pénétrer dans la cellule bactérienne.

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4
Q

Pourquoi incuber après le choc thermique dans un milieu sans antibiotique?

A

Cette étape post-choc permet aux bactéries de réparer leurs membranes, d’exprimer le gène de résistance contenu sur le plasmide, et donc de survivre ensuite sur le milieu avec antibiotique.

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5
Q

Que se passe-t-il si on prolonge le choc thermique au-delà de 90 s ?

A

Un choc thermique trop long endommage irréversiblement la membrane cellulaire et peut tuer les bactéries avant qu’elles aient eu le temps d’intégrer ou d’exprimer le plasmide.

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6
Q

Quel est le rôle du plasmide dans une transformation ?

A

Le plasmide joue le rôle de vecteur. Il porte généralement un gène de sélection (comme AmpR) et le gène d’intérêt (ex. : une protéine à exprimer). Il permet à la bactérie de produire cette protéine ou de survivre dans un milieu sélectif.

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7
Q

But d’une minipréparation (miniprep)

A

La minipréparation est une méthode rapide et efficace pour isoler l’ADN plasmidique à partir d’une culture bactérienne. On utilise des tampons de lyse et des colonnes de silice pour purifier l’ADN circulaire.

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8
Q

Rôle du tampon P2

A

Le tampon P2 contient du SDS et de l’hydroxyde de sodium. Il détruit les membranes cellulaires et dénature l’ADN génomique et les protéines, facilitant l’extraction de l’ADN plasmidique.

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9
Q

Pourquoi ajouter N3 après P2 ?

A

Le tampon N3 est acide et neutralise l’alcalinité du P2. Il provoque la précipitation des débris cellulaires, des protéines et de l’ADN chromosomique. L’ADN plasmidique reste soluble.

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10
Q

Pourquoi utiliser une colonne de silice ?

A

La silice fixe sélectivement l’ADN en présence de sels chaotropiques. Les impuretés sont éliminées au lavage, puis l’ADN est élué dans un tampon ou de l’eau stérile.

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11
Q

Utilité de plusieurs digestions enzymatiques

A

Différentes enzymes coupent à des sites spécifiques. Comparer les profils de fragments permet de confirmer l’identité, la taille et l’intégrité du plasmide extrait.

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12
Q

Principe de l’électrophorèse sur gel

A

L’ADN est chargé négativement. Lorsqu’il est placé dans un champ électrique, il migre vers la borne positive à travers un gel d’agarose. Ce gel agit comme un tamis, séparant les fragments d’ADN selon leur taille : les petits fragments migrent plus loin que les grands.

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13
Q

Pourquoi l’ADN migre-t-il vers la borne + ?

A

Chaque molécule d’ADN porte des groupements phosphate qui sont négativement chargés. En électrophorèse, ces charges font migrer l’ADN vers l’anode (borne +) sous l’effet du courant électrique.

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14
Q

Que permet de vérifier la digestion enzymatique sur gel ?

A

En analysant les bandes obtenues sur gel après digestion enzymatique, on peut confirmer que le plasmide a la bonne taille, qu’il a été bien digéré et qu’il possède la conformation attendue (linéaire, superenroulée, etc.).

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15
Q

Différence entre superenroulé et linéaire sur gel

A

L’ADN superenroulé est plus compact et traverse plus facilement le gel, donc il migre plus rapidement. L’ADN linéaire est plus relâché et migre à une vitesse intermédiaire, tandis que l’ADN relâché circule plus lentement.

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16
Q

Rôle du ladder dans un gel

A

Le ladder est un mélange de fragments d’ADN de tailles connues. Il sert de référence pour déterminer la taille des fragments expérimentaux en comparant leur distance de migration.

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17
Q

But de l’induction par IPTG

A

L’IPTG est un inducteur chimique qui se lie au répresseur lacI, le désactivant. Cela libère le promoteur tac et permet l’expression du gène situé en aval, codant souvent une protéine recombinante comme GST-fusion.

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18
Q

Rôle du lysozyme dans la lyse cellulaire

A

Le lysozyme coupe les liens glycosidiques du peptidoglycane, composant principal de la paroi des bactéries Gram-, facilitant leur lyse mécanique ou chimique.

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19
Q

Rôle du Triton X-100

A

Triton X-100 est un détergent non ionique qui interagit avec les lipides de la membrane plasmique, entraînant sa rupture douce tout en conservant l’activité des protéines.

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20
Q

Pourquoi manipuler sur glace pendant l’extraction ?

A

La glace ralentit les réactions enzymatiques et évite la dénaturation thermique des protéines lors de la lyse ou de la sonication, garantissant une meilleure récupération.

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21
Q

Pourquoi conserver le surnageant après centrifugation ?

A

Après centrifugation, le surnageant contient les protéines libérées des cellules, y compris la protéine d’intérêt, tandis que les débris insolubles restent dans le culot.

22
Q

Principe de la chromatographie d’affinité

A

La chromatographie d’affinité exploite l’affinité entre une étiquette de fusion (ex. GST) et un ligand (glutathion) fixé sur une matrice solide. Cela permet d’isoler spécifiquement la protéine cible.

23
Q

Pourquoi utilise-t-on une étiquette GST ?

A

L’étiquette GST permet à la protéine recombinante de se fixer à une résine contenant du glutathion, rendant la purification spécifique, rapide et efficace.

24
Q

Différence entre phase de lavage et d’élution

A

Le lavage retire les contaminants sans affinité, tandis que l’élution libère la protéine liée en ajoutant du glutathion libre en solution, qui entre en compétition avec la résine.

25
Comment la protéine est-elle retenue sur la colonne ?
L’étiquette GST de la protéine se lie avec forte affinité au glutathion fixé sur la résine de la colonne, assurant une rétention sélective pendant le lavage.
26
But du dosage protéique
En utilisant un réactif colorimétrique (ex. Bradford), on génère une couleur dont l’intensité dépend de la concentration en protéines. La mesure d’absorbance permet d’en déduire la concentration par comparaison à une courbe standard.
27
Pourquoi préparer une gamme de standards BSA ?
Les standards contiennent des concentrations connues de BSA. La courbe obtenue permet d’interpréter les valeurs d’absorbance des échantillons inconnus.
28
Pourquoi utiliser toujours la même longueur d’onde ?
Chaque réactif a une absorbance maximale à une longueur d’onde donnée. Mesurer toujours à cette longueur (ex. 595 nm pour Bradford) garantit la fiabilité des résultats.
29
Que signifie une absorbance trop élevée ?
Cela signifie que la quantité de protéine est trop élevée pour être mesurée avec précision. Il faut diluer l’échantillon et refaire la lecture.
30
Pourquoi utilise-t-on des bactéries compétentes ?
Pour faciliter l’entrée de l’ADN plasmidique exogène.
31
Que contient généralement le plasmide utilisé en transformation ?
Un gène d’intérêt et un gène de sélection (ex. résistance à un antibiotique).
32
Pourquoi ne faut-il pas ajouter l’antibiotique immédiatement après la transformation ?
Les bactéries ont besoin de temps pour exprimer le gène de résistance.
33
Quelle est la conséquence si les bactéries ne reçoivent pas le plasmide ?
Elles ne survivront pas sur le milieu contenant l’antibiotique.
34
Que contient le culot après ajout de N3 et centrifugation ?
Débris cellulaires, ADN génomique, protéines.
35
Pourquoi ne faut-il pas vortexer après P2/N3 ?
Pour éviter de cisailler l’ADN plasmidique.
36
Pourquoi inclure un tube sans enzyme dans une digestion enzymatique ?
Servir de contrôle pour vérifier que l’ADN est bien présent.
37
Quel est le rôle d’EcoRI ou BamHI dans une digestion ?
Couper l’ADN à des sites spécifiques pour analyser sa structure.
38
Comment prépare-t-on un gel d’agarose ?
En chauffant l’agarose avec un tampon, puis en le coulant dans un moule.
39
À quoi sert le colorant dans le tampon de chargement ?
À visualiser la migration des échantillons.
40
Pourquoi ne faut-il pas inverser les polarités dans le gel ?
L’ADN migrerait dans la mauvaise direction.
41
Quel type de fragments migrent le plus vite dans un gel d’agarose ?
Les plus petits.
42
Pourquoi alterner sonication et pauses sur glace ?
Éviter la surchauffe qui dénaturerait les protéines.
43
Quelles sont les méthodes utilisées pour lyser les cellules ?
Lysozyme, Triton X-100, sonication.
44
Pourquoi centrifuger après la lyse ?
Séparer les débris insolubles des protéines solubles.
45
Que contient le flow-through d’une chromatographie ?
Les protéines non fixées à la colonne.
46
Pourquoi éviter la surcharge de la colonne ?
Pour ne pas saturer la résine et perdre la protéine d’intérêt.
47
Qu’est-ce que l’élution dans une chromatographie ?
Étape où l’on récupère la protéine fixée en modifiant les conditions.
48
Pourquoi utilise-t-on un blanc dans le dosage ?
Pour calibrer le spectrophotomètre en retirant les interférences.
49
Quel est le rôle du réactif de Bradford ?
Réagit avec les protéines pour produire une couleur proportionnelle à leur concentration.
50
Pourquoi faut-il que les volumes des standards et échantillons soient identiques ?
Pour que les mesures soient comparables.