Lester 4ed chap1-7 Flashcards
(108 cards)
1
Q
Citez 5 éléments essentiels d’une requête d’évaluation en pathologie
A
- ID patient
- ID requérant
- Histoire clinique
- Date prélèvement du spécimen
- Information relative au spécimen
2
Q
Nommez des exemples de requérants pour évaluation en pathologie
A
- Clinicien (Chirurgien, Radiologiste, Oncologue
- Pathologiste)
- Coroner
- Famille de patient(e)
- Service médico-légal
3
Q
Quelle est l’utilité de la date de prélèvement du spécimen?
A
Déterminer:
- Corrélation clinico-pathologique (laboratoires, sérologies, imagerie vs biopsie)
- Temps d’ischémie du spécimen
- Délai potentiel durant le transport
- Durée de traitement d’une requête
- Facturation
4
Q
Quelle est l’utilité de l’histoire clinique?
A
Déterminer:
- Nature de la procédure (diagnostic, résection, ré-excision, thérapie, esthétique)
- Anatomie (site, région, latéralité)
- Nombre de lésion(s) et leur relation (distance)
- Présence de traceurs
- Comorbidités et ATCD génétiques/familiaux
- Diagnostiques antérieurs de cancer
- Chirurgies antérieures
- Traitements antérieurs (radiothérapie, chimiothérapie, transfusion)
- Communication de valeurs critiques
5
Q
Nommez des information importantes relatives au spécimen
A
- Procédure
- Techniques spéciales (Fixation vs saline, Tissu lymphoïde, Balles, Métaux, Peau si TEN)
- Transport
- Critères de rejet
- Délai de disposition
- Instructions spéciales (Patient, Famille, Manufacturier, Médico-légal)
- Orientation
- Marqueurs
6
Q
Énumérez le délai de disposition d’un échantillon selon le type d’analyse
A
- 5 ans : Lames (-)
- 20 ans : Lames (+), Blocs, FISH, Cytologie, Analyse moléculaire, Images
- Indéfiniment: Rapport
7
Q
Définir les éléments d’une orientation spatiale idéale pour un spécimen
A
- Supérieur/court
- Latéral/long
pour déterminer SI x AP x IE, en cm
8
Q
Nommez des critères de rejet de spécimen
A
ID inadéquat:
- patient erroné
- mélange de contenants d’un même patient
Échantillon inadéquat:
- absent
- souillé
- dégradé
9
Q
Nommez différentes façons d’orienter un spécimen
A
- Sutures
- Agrafes
- Traceurs
- Drapage
- Diagramme
- Section
- Encrage
10
Q
Nommez des motifs de prélèvement de spécimen
A
- Diagnostic
- Résection (tumeur, marges)
- Ré-excision
- Thérapie
- Esthétique
11
Q
Quel est le but de l’examen macroscopique?
A
Identifier :
- Structures anatomiques (diagramme, photo)
- Marqueurs d’orientation (sutures, agrafes, tatouages)
- Traceurs (radiologie)
- Mesures (SI x AP x IE en cm, poids en g)
- Encrages (lésion suspecte/marges)
- Examen détaillé (cavités, liquides, lésions, invasion, ganglions)
12
Q
Pourquoi dit-on que le ganglion est la lésion la plus importante d’un spécimen?
A
Sa présence peut être l’indice de:
- Fortuitome = diagnostic de lésion non-suspectée
- Maladie auto-immune = Rhumatismes, Connectivites, Vasculites
- Néoplasie
- Infection opportuniste
13
Q
Nommez des causes de diminution du nombre de ganglions dans un spécimen
A
- Âge
- Radiothérapie
- Chimiothérapie
- Résection limitée
14
Q
Quelle est l’utilité des marges d’encrage?
A
- Documenter la présence de lésion(s) ou non
15
Q
Caractériser la marge de type “En face”
A
- Avantages: étude d’une surface plus importante, totalité du spécimen
- Désavantages: impossibilité d’évaluer la distance à la marge, artéfact de cautérisation possible, orientation difficile
16
Q
Caractériser la marge de type “Perpendiculaire”
A
- Avantages: la plus utilisée, distance à la marge évaluable
- Désavantages: très petites portions de marge si résection large
17
Q
Nommez les étapes de l’encrage de spécimen
A
- RETRAIT AGRAFES
- SÉCHAGE du spécimen
- ENCRAGE du spécimen (plusieurs couleurs possibles)
- APPLICATION DU MORDANT: Acide acétique, Méthanol
- APPLICATION AGRAFES AUX MARGES
18
Q
Nommez des éléments importants à considérer lorsque le spécimen contient multiples lésions
A
- Type de lésion(s): Primaire vs Métastase
- Nombre de lésion(s)
- Relation entre lésion(s): distance, organisation
19
Q
Lorsque le spécimen contient multiples lésions, il est impératif de….
A
Soumettre un échantillonnage pour:
- chaque lésion
- chaque portion de tissu inter-lésionnel si < 2cm
20
Q
En situation de contenant de spécimen VIDE, il faut…
A
- Examiner attentivement le contenant (pot, couvercle, bistouri, aspiration, passoire)
- Remonter chaîne de traitement (histotechnicien, secrétaire)
- Contacter le clinicien requérant et documenter le l’échange
- Conserver le contenant jusqu’à résolution du problème
21
Q
En situation de spécimen PERDU APRÈS RÉCEPTION, il faut…
A
- Vérifier si l’échantillon requiert des instructions spéciales à cause du risque infectieux (ex : TB, prions)
- Vérifier si l’échantillon a été PERDU accidentellement
22
Q
Nommez des termes descriptifs de FORME de lésion
A
FORME:
Circonscrite, Spéculée, Irrégulière, Serpigineuse, Dentelée, Bosselée, Lobulée, Maculaire, Papulaire, Papillaire, Villeuse, Pédonculée, Sessile, Exo/Endophytique, Verruqueuse, Fimbriée
23
Q
Nommez des termes descriptifs de TEXTURE de lésion/muqueuse
A
- TEXTURE: Veloutée, Friable, Papyracée, Scabreuse
24
Q
Nommez des termes descriptifs de SUBSTANCE FLUIDE
A
- FLUIDE: Visqueuse, Séreuse/Aqueuse, Muqueuse/Gélatineuse, Épaisse, Suppurée, Collante, Purulente, Malodorante
25
Associez des termes descriptifs à des diagnostics ou interprétations présumés:
MASSE = ...
IRRÉGULARITÉ = ...
SOLIDITÉ = ...
INVASION = ...
HÉMORRAGIE = ...
OXYDATION SANG = ...
PURULENCE = ...
LIPONÉCROSE = ...
MASSE = Carcinome
IRRÉGULARITÉ, INVASION, SOLIDITÉ = Malignité
HÉMORRAGIE = Rougeâtre/Brunâtre
OXYDATION SANG = Verdâtre
PURULENCE = Verdâtre
LIPONÉCROSE = Jaunâtre/Beige
26
Caractéristiques de la Formaline (4% formaldéhyde)
Spécimen:
Plusieurs
Propriétés:
- Pénétrance lente (0.1cm/6h donc 6-8hrs minimum)
- Artéfacts nucléaires
- Dissolution cristaux goutteux/calcifications
- Toxicité respiratoire; Carcinogénicité
27
Caractéristiques du B+ (= Formaline + ZnCl2) et
B5 (= Formaline + ZnCl2 + HgCl2)
Spécimen:
Rate, Ganglions, Organes lymphoïdes, Sang
Propriétés:
- Pénétrance lente (0.1cm/6h donc 6-8hrs minimum)
- Artéfacts nucléaires
- Dissolution cristaux goutteux/calcifications
- Inhibition PCR
- Toxicité respiratoire; Carcinogénicité
28
Caractéristiques du Bouin (Picrate, Acétate, Formaldéhyde)
Spécimen:
Ganglions, Moelle osseuse, petit spécimen
Propriétés:
- 8hrs maximum
- Dissolution fer/calcifications
- Dégradation ADN/ARN
- Précaution avec étude immunopéroxydase
- Risque explosion
29
Caractéristiques du Zenker (= K2Cr2O7 + CH3COOH + HgCl2)
Spécimen:
Moelle osseuse, Sang, Tissus mous (muscle), Cellules argentaffines
Propriétés:
- Pénétrance lente
- Précaution temps de fixation/rinçage
- Dissolution fer
- Perte antigénicité
- Inhibition PCR
- Corrosion métaux; Risque contact avec peau
30
Caractéristiques du glutaraldéhyde (dans tampon 0.1M cacodylate)
Spécimen:
Microscopie électronique
Propriétés:
- Pénétrance lente
- Précaution temps de fixation/rinçage
- Réfrigération nécessaire
- Faux (+) au PAS
31
Caractéristiques du Méthanol/Éthanol
Spécimen:
Déshydratation, Goutte, Étalement, Impression, Congélation
Propriétés:
- Pénétrance lente
- Précaution temps de fixation/rinçage
- Dissolution lipides
- Rétrécissement tissulaire
32
Caractéristiques des fixateurs contenant ROH autres que Formaline
Avantages: Plusieurs options, Facilité usage/coût, qualité immunopéroxydase
Désavantages: Protocoles non-validés, Pénétrance lente (petit spécimen), Préservation noyau/cellule sous-optimale, Attention immunoperoxydase ER/PR
33
Nommez des éléments essentiels pour l'échantillonnage optimal du spécimen
Échantillonnage (20 cassettes typiquement) :
- Lésions
- GANGLIONS
- MARGES
- Tissu sain patient (contrôle interne)
- Tissu autre que patient (contrôle externe)
34
Nommez des avantages/inconvénients de la fixation du spécimen
AVANTAGES:
- Préservation du tissu
- Durcissement du tissu
- Stabilisation du tissu
- Inactivation agent infectieux
- Accroître avidité colorants.
DÉSAVANTAGES:
- Altération structure protéique
- Perte cholestérol/glycogène
- Dégradation ADN/ARN
- Rétrécissement tissu
35
Indiquez des paramètres importants pour la fixation du spécimen
- Pénétrance (épaisseur)
- Volume (15-20x)
- Température de fixation
- Temps de fixation
- Temps d’ischémie (pathologie, arrêt perfusion, prélèvement, transport, technique)
36
Quel est le temps d'ischémie froide maximale acceptable?
1 heure
37
Décrire les étapes de la technique du spécimen (contenu dans une cassette suivant l'étape de fixation avec circulateur)
1) Déshydratation (Alcools)
2) Clarification (Xylène/Toluène)
3) Enrobage (avec paraffine)
4) Déparaffinisation
5) Inclusion avec orientation
38
Nommez des artéfacts causés par l'alcool durant l'étape de déshydratation?
- Dissolution des lipides
- Dissolution du glycogène
39
Quelles propriétés du Xylène et du Toluène en font des clarificateurs idéaux?
Ce sont des substances miscibles avec l'alcool et la paraffine
40
Nommez des caractéristiques du spécimen (tissu) influençant la qualité de la technique
- Teneur en graisse/eau
- Épaisseur/Orientation
- Nombre/taille de fragments
- Fixation
- Métal (agrafes, sutures, éclats balles), Cheveux (ex : sillon pilonidal), Calcifications
41
Nommez 5 exemples de valeurs critiques en pathologie
1) Tissu adipeux / polypectomie endoscopique
2) Embole adipeuse / curettage endométrial
3) Tissu trophoblastique ou villeux absent / grossesse
4) Infection / immunosuppression
5) Réactivation virale / immunosuppression (ex: PTLD)
6) Glomérulosclérose >50% / biopsie rénale
7) Néoplasme inattendu (ex: lymphome MALT)
8) Néoplasme / contexte SVC
9) Néoplasme / paralysie centrale ou périphérique
10) Infection LCR, LBA, Synovium, Endocardium
11) Mycobacterium, Actinomyces, Herpès, Candida, Pneumocystis
42
Nommez les types de pré-traitement de la lame de verre couramment utilisés augmentant la qualité de la technique
Prétraitement :
- Glycine
- Poly-L-Lysine
- Charge (-)
43
Nommez des types d'artéfacts possibles :
Artéfacts possibles :
- Mauvaise identification/orientation (TYPE I SPC)
- Rétrécissement (shrinkage)
- Trou (hole)
- Déchirement (tear)
- Pli (folds)
- Inégalité (chatter)
- Flotteur (floater, TYPE II SPC)
- Tourbillon (swirlie)
44
Quelle est l'attitude à tenir en situation de flotteurs (floaters, TYPE II SPC)?
1) Encercler contaminant sur la lame
2) Vérifier propreté chaîne de traitement du spécimen (instruments, solutions encre/fixateur, circulateurs, stations)
3) Vérifier bloc/autres blocs du même jour
4) Refaire des sections
5) Retirer contaminant et refaire bloc
6) Mentionner dans le rapport
7) Tester ADN
45
Quelle est l'utilité du rapport de pathologie pour le patient? Pour l’institution?
Patient:
1) Diagnostic (Néoplasme, Infection, Corps étranger)
2) Pronostic (ex: Ki-67)
3) Thérapie (ex: ER/PR, c-kit/CD117, PD-L1)
4) Critères éligibilité pour ECRs (cohortes)
Institution:
1) Banques de données
2) Assurance-Qualité
46
Nommez des éléments importants de la section "Identifiants" d'un rapport de pathologie
- Institution (Nom/Adresse/Téléphone)
- Patient (DDN/RAMQ/No. Dossier)
- Pathologiste
- Histotechnicien
47
Nommez des éléments importants de la section "Information spécifique à envoi" rapport de pathologie
- Clinicien requérant
- Date procédure/réception
- Données cliniques de requête
- Type/Liste spécimens soumis de requête
- Instructions spéciales
- Information spécifique à examen spécimen envoi
- Numéro de requête
48
Nommez des éléments importants de la section "Évaluation" rapport de pathologie
- Macroscopie (Trouvailles, Échantillonnage soumis)
- Microscopie (Trouvailles)
- Diagnostic de pathologie avec rapport synoptique si néoplasme
- Examen extemporané
- Codes de facturation
- Addenda (étude complémentaire)
- Révision
- Date validation rapport
49
Nommez des situations qui peuvent engendrer une révision de rapport de pathologie
- Discordance extemporané vs H&E
- Discordance entre pathologistes si consultation
- Découverte inattendue (tumeurs, infections)
- Erreur d'identification
- Information critique ajoutée en addendum
50
Nommez 7 facteurs influençant l'antigénicité du spécimen
- Type de prélèvement spécimen (cautérisation vs biopsie)
- Temps d’ischémie (idéal <1hre)
- Fixation
- Technique
- Section
- Délai entre coupe et étude immunohistochimique
- Récupération antigène (température, enzyme)
51
Nommez 2 éléments essentiels pour une étude immunohistochimique optimale
1) Anticorps
2) Contrôle/Panel d’immunomarquage
52
Indiquez 9 paramètres essentiels d'utilisation d'un anticorps pour une étude immunohistochimique
1) Type
2) Dilution
3) Conditions d'incubation
4) Méthode de récupération d'antigène
5) Blocage
6) Méthode de détection
7) Chromogène
8) Contre-coloration
9 ) Multiplex
53
Indiquez les 3 types de contrôles essentiels employés pour une une étude immunopéroxydase
1) Interne (tissu patient)
2) Externe (tissu autre que patient)
3) Négative (anticorps primaire absent ou non-immun)
54
Indiquez un type cellulaire exprimant:
S100 :
CD31 :
aSMA :
C-kit :
Vimentine :
Desmine :
Kératines HPM (1-6; 9-17) :
Kératines BPM (7,8, 18-20) :
CD15 :
S100 : mélanocyte, cellule Langerhans, nerf
CD31 : endothélium
aSMA : cellule myoépithéliale
C-kit : mastocyte
Vimentine : mésenchyme
Desmine : muscle
Kératines HPM (1-6; 9-17) : épithélium malpighien
Kératines BPM (7,8, 18-20) : épithélium glandulaire
CD15 : polymorphonucléaire
55
Indiquez 7 éléments à considérer lors de l'interprétation de lames pour une étude immunopéroxydase
1) Site
2) Section centre vs limites
3) Bruit de fond
4) État tissu (âge lame)
5) Localisation inadéquate/aberrante
6) Cellules immunes
7) Intensité marquage
56
Indiquez 7 éléments à considérer lors de l'interprétation de lames pour une étude immunopéroxydase
1) Site
2) Section centre vs limites
3) Bruit de fond
4) État tissu, âge lame
5) Localisation inadéquate/aberrante (TTF-1, Ki67, NMP1 nucléaire vs E-cadhérine, p120 caténine, bêta-caténine membranaire)
6) Cellules immunes
7) Intensité marquage
57
Nommez les avantages des études immunohistochimiques de type Multiplex
- Étude cellules peu nombreuses
- Multiples antigènes/populations de cellules
58
Donnez des exemples de panel Multiplex
Exemples :
- Sein (ADH-5, Triview, Triple stain, LC/DC)
- Prostate (AMACR, Kératines HPM, p63)
- Liquide pleural (AE1/AE3 + WT1)
- Mélanome (tyrosinase, MART-1, HMB45, S100)
59
Expliquer le principe de classification des tumeurs différentiées par étude immunohistochimique
Utiliser un panel incluant : Kératines 7 et 20
SCC, HPC, TNE, autres : CK7(-) CK20 (-)
CA BRAFmut: CK7(+) CK20 (-)
COLORCA MSI-H, MRKLCA : CK7(-) CK20 (+)
CCA, UCA, PCA, OCA, OMCA: CK7(+) CK20 (+)
60
Expliquer le principe de classification des tumeurs indifférentiées par étude immunohistochimique
Utiliser un panel incluant :
- Kératines (épithélium)
- S100 (mélanocyte, histiocyte, nerf)
- LCA (cellules immunes)
61
Donnez les 6 éléments essentiels au rapport d'étude immunohistochimique
1) Type tissu
2) Anticorps avec spécificité (contrôles interne/externe)
3) Malin vs bénin
4) Immunoréactivité/Intensité
5) Nombre de cellules, Pourcentage
6) Références
62
Nommez les types d'immunofluorescence
- Directe
- Indirecte
63
Quelle est l'utilité de l'immunofluorescence en pathologie
1) Peau (TEN, SLE, Herpes, IgA, Ig/C3)
2) Reins
3) Cerveau
4) Cœur
5) Nerfs
64
Nommez les 3 types d'anomalies détectables par PCR
1) Altérations cellules germinales
2) Mutations somatiques
3) Maladies infectieuses (Fungi, Bactérie, Virus)
65
Caractéristiques du Bouin (Picrate, acétate, formaldéhyde)
Spécimen:
Ganglions, Moelle osseuse, petit spécimen
Propriétés:
- 8hrs maximum
- Dissolution fer/calcifications
- Dégradation ADN/ARN
- Précaution avec immunoperoxydase
- Risque explosion
66
Nommez 6 types de consultations en pathologie
1) Médico-légal
2) Intra-hospitalière
3) Institutionnelle
4) Spécialiste
5) Étude spéciale (Coloration, Microscopie électronique)
6) Recherche
67
Définir un test immunohisto/cytochimique de classe 1
Un test immunohisto/cytochimique :
1) réalisé dans un contexte clinique ET
2) interprété par un(e) pathologiste ET
3) confirmant les résultats d'études histo/cytomorphologiques
Ex : S100, p63, CD45
68
Définir un test immunohisto/cytochimique de classe 2
Un test immunohisto/cytochimique :
1) réalisé dans un contexte clinique ET
2) interprété par un(e) pathologiste ET
3) ne pouvant confirmer directement les résultats d'études histo/cytomorphologiques
Ex : Dosage hormonal ou marqueur sérique, C-kit (Leucémie aiguë), Bcl-2 (Lymphome folliculaire)
69
Définir un test immunohisto/cytochimique qualitatif
Un test immunohisto/cytochimique dont:
1) le résultat est positif ou négatif
2) l'usage implique l'emploi d'une valeur-seuil
3) l'optimisation nécessite l'usage de contrôle interne/externe
4) la calibration nécessite une validation d'assurance/contrôle-qualité
Ex : Ki-67/cancer du sein
70
Définir un test immunohisto/cytochimique quantitatif
Un test immunohisto/cytochimique dont:
1) le résultat est rapporté systématiquement selon un score établi
2) l'usage implique l'évaluation d'images ou le décompte cellulaire manuel
3) l'optimisation nécessite l'usage de contrôle interne/externe
4) la performance est déterminée par consensus entre professionnels/chercheurs/cliniciens
71
Définir un test immunohisto/cytochimique pronostic
Un test immunohisto/cytochimique qualitatif ou quantitatif pouvant déterminer, de manière indépendante, l'issue clinique de la condition du patient
72
Définir un test immunohisto/cytochimique prédictif
Un test immunohisto/cytochimique qualitatif ou quantitatif pouvant déterminer, de manière indépendante, la réponse à une thérapie
Ex : HER2/cancer du sein, c-kit/ GIST, anticorps CD/lymphome ou leucémie
73
Nommez 5 types de contrôle d'étude immunohistochimique utilisés en contrôle-qualité
- Tissu humain
- Lignée cellulaire
- Préparation lyophilisée
- Solution
- Appareil
74
Quelles sont les limites de l'examen extemporané?
1) Échantillonnage
2) Artéfacts de congélation
3) Absence d'études spéciales
4) Impossibilité de consultations sur le champ
75
Indiquez 5 éléments d'information pertinents à un examen extemporané?
1) Identifiants
2) Histoire clinique
3) Motif procédure
4) Type procédure
5) Potential infectieux de l'échantillonnage
76
Quelle est la taille optimale d'une portion de tissu pour un examen extemporané?
0.5 x 0.5 x 0.3 cm
77
Nommez des éléments relatifs au tissu et à la technique pouvant influencer la qualité d'un examen extemporané?
Tissu :
- Teneur en eau
- Teneur en graisse
- Épaisseur
- Orientation
- Nombre/taille de fragments
- Métal (agrafes, sutures, éclats balles)
- Cheveux (ex : sillon pilonidal)
- Calcifications
Technique :
- Fixation au méthanol
78
Décrire les étapes de la coloration Hématoxylline-Éosine et mentionner l’objectif de chacune
1) HÉMATOXYLINE 90 secondes avec agitation (colorer noyaux en bleu)
2) RINÇAGE À L'EAU 10 secondes (enlever excédent colorant)
3) HCL 1% 2 secondes (enlever colorant des éléments non-nucléaires; ATTN: étape optionnelle influençant qualité de coloration)
4) BORATE DE SODIUM 2% 2 secondes (alcaliniser et optimiser coloration noyaux)
5) ÉOSINE 30 secondes (colorer protéines cytoplasmiques rouge/rose)
6) DÉSHYDRATATION avec solutions d'alcools en concentration croissante (ATTN: étape optionnelle influençant qualité de coloration)
7) XYLÈNE (poursuivre déshydratation)
8) MONTAGE
79
Quelles sont les deux étapes du protocole de coloration à l’H&E qui peuvent nuire à la qualité de la coloration?
Les étapes de :
1) décoloration des éléments non-nucléaires (HCL 2%)
2) déshydratation (solutions d’alcools en concentration croissante)
80
Dans quelle(s) situation(s), l'examen par préparation cytologique est utile et nécessaire?
1) Désordres lymphoprolifératifs
2) Lésions du système nerveux central
3) Infections
4) Nodules thyroïdiens
5) Nodules pulmonaires
6) Néoplasmes à documenter avant études spéciales
7) Échantillons difficiles à congeler
8) Petits spécimens
81
Nommez les éléments importants figurant sur un rapport d'examen extemporané
1) Identifiants
2) Type d'examen (macroscopie, congélation, cytologie)
3) Diagnostic
4) Disposition de l'échantillon restant
5) Date/Heure de réception
6) Date/Heure de validation du rapport
82
Nommez les types de préparations cytologiques usuelles
- Aspiration aiguille fine (23G, 25G)
- Impression
- Étalement
83
Indiquez les 2 types de coloration utilisées couramment pour les préparations cytologiques
- Hématoxyline-Éosine
- Diff-Quik (Giemsa modifié)
84
Définir les catégories de discordance reconnues en analyse d'assurance-qualité
- Catégorie A : discordance mineure sans impact sur prise en charge
- Catégorie B : discordance avec impact non-significatif sur la prise en charge
- Catégorie C : discordance majeure avec impact significatif sur la prise en charge
85
Quelles sont les sources d'erreurs communes lors d'un examen extemporané?
- Échantillonnage (site/taille du spécimen)
- Interprétation (bénin vs malin, histoire clinique, examen marges)
- Technique (préparation, artéfact de congélation)
- Histoire clinique incomplète/inadéquate
- Autres
86
Énumérer les requêtes typiques d'examen extemporané
OS
- BIOPSIE OSSEUSE (évaluer curettage/drapage par congélation)
- LARGE SPÉCIMEN (évaluer marges par cytologie/congélation )
- ARTHROPLASTIE (évaluer infection par congélation )
PEAU
- ELLIPSE CUTANÉE (carcinome basaloïde/épidermoïde, évaluer marges par congélation)
- PEAU EXFOLIÉE (épidermolyse S. aureus vs toxique)
- BIOPSIE CUTANÉE EXCISIONNELLE (fasciite nécrosante, évaluer atteinte musculaire)
SEIN
- BIOPSIE MAMMAIRE (néoplasme >1 cm UNIQUEMENT)
- MARGES (carcinome invasif, évaluer marges/ganglions)
- GANGLIONS SENTINELLES (habituellement 2, évaluer MÉTASTASES)
GASTRO-INTESTINAL
- OESOPHAGECTOMIE/GASTRECTOMIE (cancer gastrique diffus, adénocarcinome oesophagien, évaluer marges/ganglions)
- POLYPECTOMIE (cancer colorectal, évaluer marges/ganglions par congélation, ATTN rétraction 40% en 20 minutes)
- RÉSECTION INTESTINALE (évaluer Crohn/marges/ganglions)
- BIOPSIE HÉPATIQUE (hépatocarcinome ou métastase, évaluer lésion/métastase)
- BIOPSIE PANCRÉATIQUE (carcinome pancréatique, évaluer lésion/métastase)
GÉNITO-URINAIRE
- SPERME (évaluer qualité)
- NÉPHRECTOMIE, CYSTECTOMIE, URETERECTOMIE (carcinome cellulaire transitionnel, évaluer marges), VASECTOMIE
NÉPHROLOGIE
- URETÈRE (évaluer lésion/marges)
GYNÉCO-PATHOLOGIE
- OVARIECTOMIE (tumeur ovarienne, évaluer lésion/marges)
- HYSTÉRECTOMIE partielle (tumeur ovarienne, évaluer lésion/marges/invasion cervicale)
- VULVECTOMIE partielle (tumeur vulvaire, évaluer lésion/marges/invasion cervicale)
- MYOMECTOMIE (léiomyome, évaluer lésion)
- PRODUIT DE CONCEPTION (grossesse, évaluation PRÉLIMINAIRE)
PNEUMOLOGIE
- MÉDIASTINOTOMIE (cancer poumon, évaluer stade/lymphadénopathie)
- MANCHON, LOBECTOMIE, PNEUMECTOMIE partielle (cancer poumon, évaluer lésion/marges/invasion bronchique)
- BIOPSIE PULMONAIRE (cancer poumon, évaluer lésion/marges/invasion bronchique)
- BIOPSIE GANGLIONNAIRE (cancer + extension, évaluer par fixation B+ et/ou formaline, congélation, cytométrie de flux, culture microbiologique)
NEUROLOGIE
- BIOPSIE STÉRÉOTACTIQUE (SIDA, Toxoplasmose, lymphome système nerveux central, évaluer lésion cérébrale)
TISSUS MOUS
- BIOPSIE (cancer + extension, évaluer par fixation B+ et/ou formaline, congélation, cytogénétique, microscopie électronique)
TISSUS ENDOCRINIENS
- AAF (cancer folliculaire, papillaire, médullaire, évaluer par fixation B+ et/ou formaline, congélation, cytogénétique, microscopie électronique)
87
Donnez les critères diagnostiques du carcinome pancréatique?
Critères majeurs :
- Variation taille noyau (>4:1)
- Lumière glandulaire incomplète
- Distribution ductulaire désorganisée
Critères mineurs :
- Nucléoles épithéliaux proéminents et irréguliers
- Nécrose glandulaire
- Mitoses glandulaires
- Glandes sans stroma au sein de fascicules musculaires lisses
- Invasion périneurale
88
Quelle est la base du système de classification des tumeurs?
- Expression des marqueurs CK7 ET CK20
89
Nommez un panel de marqueurs pour classifier rapidement les tumeurs d'allure épithélioïde
Le panel inclut :
1) Kératines large spectre
2) S100
3) CD45
4) CDX-2 (origine gastro-intestinale, pancréato-biliaire)
5) TTF-1/Napsin-A (origine pulmonaire)
6) GATA-3 (origine mammaire)
90
Nommez un panel de marqueurs pour classifier rapidement les tumeurs d'allure fusiforme
Le panel inclut :
1) Kératines large spectre
2) S100
3) aSMA
4) Desmine
91
Quelles sont les applications des tests ADN en pathologie chirurgicale?
1) ANOMALIES DE LIGNÉES DE CELLULES GERMINALES
- Maladies héréditaires (CFTR; Fragile X; Facteur V Leiden c1601G>A; Prothrombine c20210G>A, Hémochromatose C282Y / S65C / H63D)
- Gènes de susceptibilité (cancer du sein > BRCA1/2); Lynch > MLH1, MSH2/6, PMS2; Li-Fraumeni > TP53)
2) ALTÉRATIONS GÉNOMIQUES DE CELLULES SOMATIQUES
- Anomalies d'importance diagnostique, pronostique (Ki-67 > cancer du sein), thérapeutique (HER2 >cancer du sein; c-kit > GIST)
- Clonalité dans les syndromes prolifératifs hématolymphoïdes
- Maladie résiduelle suivant un traitement (BCR-ABL1 > LLA)
- Changements épigénétiques
- Identification de virus associés aux virus (EBV > PTLD, HPV > cancer cervical, MCV > cancer cellules Merkel)
3) MALADIES INFECTIEUSES
- 18S > Fungi
- 16S > Bactéries
- Virus (EBV, CMV, HIV, HCV, HBV, BK)
4) MUTATIONS SPORADIQUES
92
Quelles sont les modalités de soumission de spécimen pour un test ADN?
- Caryotypage : spécimen frais, viable ET stérile
- Séquençage : spécimen frais, congelé, fixé à la formaline
- ISH : spécimen fixé à la formaline, cytospin, étalement, impression
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Quelle modalité d'analyse ADN est la plus utilisée en pathologie?
La méthode FISH (nombre de copies, réarrangements)
94
Quelles sont les indications pour la microscopie électronique?
1) Biopsie rénale > maladie glomérulaire
2) Biopsie musculaire
3) Biopsie nerveuse
4) Maladie épidermolytique
5) Dysmorphologie ciliaire
6) Biopsie endomyocardique
7) Biopsie hépatique
8) Maladies intestinales infectieuses
9) Maladies métaboliques
95
Quelles sont les trois indications les plus courantes pour la cytométrie de flux?
1) Ploïdie
> Mole hydatiforme
2) Phases du cycle cellulaire
> S/carcinome
3) Marqueurs de surface
> Leucémies, Lymphomes, COVID
96
Quelle est la modalité de soumission de spécimen pour une cytométrie de flux?
Spécimen frais milieu Hank's
97
Quels sont les 4 types de spécimens pour lesquels la radiographie est essentielle?
1) Sein
2) Os/Cartilage
3) Néoplasmes osseux
4) Valves cardiaques bioprosthétiques
98
Quels sont les avantages et inconvénients de la culture microbiologique d'un agent infectieux?
AVANTAGES :
- plusieurs types d'échantillons cultivables
- amplification de l'agent infectieux
- possibilité de tester susceptibilité de l'agent infectieux
INCONVÉNIENTS :
- amplification de l'agent infectieux parfois impossible (temps d'incubation prolongé)
- contamination possible
99
Quels sont les avantages et inconvénients de l'étude histologique d'un agent infectieux?
AVANTAGES :
- identification de l'agent infectieux non amplifié par culture microbiologique
- caractériser l'agent infectieux par la réponse inflammatoire provoquée
- possibilité d'identifier l'agent infectieux par PCR
INCONVÉNIENTS :
- spécimen chirurgical requis
- identification difficile de l'agent infectieux
- spécificité limitée aux catégories d'agent infectieux
100
Nommez des dangers potentiels auxquels sont exposés les travailleurs dans un laboratoire de pathologie
1) Maladies musculo-squelettiques
2) Maladies de la vision
3) Maladies infectieuses
4) Maladies néoplasiques
5) Maladies allergiques/irritatives
6) Maladies psychologiques
7) Exposition des muqueuses (piqûres, coupures)
8) Exposition radioactive (manipulation, palpation)
9) Exposition chimique (éclaboussures, vapeurs)
10) Épuisement
101
Pour quels agents infectieux, existe-t-il une prophylaxie post-exposition efficace?
1) HIV
2) HBV
102
Nommez des agents infectieux qui ne sont pas inactivés par la fixation à la formaline
1) Tuberculose
2) Prions
103
Nommez des modes documentés de transmission de cancer humain-à-humain
1) Inoculation accidentelle
2) Transmission in utero entre jumeaux monozygotes
3) Transmission mère-enfant
4) Transplantation
104
Nommez des substances polarisables au microscope à lumière blanche
1) Amyloïde
2) Os
3) Oxalate de calcium
4) Pyrophosphate de calcium
5) Acide urique
6) Coton
7) Amidon
8) Insectes
9) Végétaux
105
Indiquez des méthodes de mesure d'éléments microscopiques
1) Vernier
2) Réfractomètre
3) Règle
4) Micromètre de plateau
5) Dimension du champ
6) Cellules sur spécimen ( hématie 7 microns)
106
Nommez des moyens de préparation du spécimen
1) Inflation
2) Immersion
3) Flottaison
4) Transillumination
5) Dissection
6) Révélation
7) Sondes
107
Nommez les quatre types de coloration utiles pour visualiser les mycobactéries
1) Ziehl-Nielsen
2) FITE
3) Auramine-Rhodamine
4) Kinouyn
108
