Méthodes d'étude Flashcards

(39 cards)

1
Q

def tissus et les nommer

A

ensemble coopératif de cellules + MEC (SF + fibres)
il y a 5 tissus fondamentaux:
1) épithéliums de revêtement et glandulaires
2) tissus conjonctifs et squelettiques
3) cellules sanguines et hématopoïétiques
4) tissus musculaires
5) tissus nerveux

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2
Q

organes

A

organe = ensemble de tissus
regroupement des organes en appareils et en systèmes:
-appareil cardio-vasculaire
-système immunitaire
-appareil respiratoire
-appareil digestif
-système nerveux
-système endocrinien
-appareil urinaire
-appareil tégumentaire
-organes des sens

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3
Q

taille cellule

A

5 à 20μm

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4
Q

pouvoir séparateur

A

distance la plus petite entre 2 points vus séparément
-oeil: 0,2mm
-MO: 0,2μm
-ME : 0,2nm

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5
Q

quelle technique pour description morphologique des structures biologiques?

A

-MO : source lumineuse = faisceau de photons
-ME : source lumineause = faisceau d’électrons

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6
Q

étapes de la préparation des échantillons pour examen en MO

A

1) fixation
2) inclusion
3) coupe = microtomie
4) coloration
5) montage

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7
Q

fixation en MO
! donner les fixateurs

A

-pour préserver les structures biologiques
-le + rapidement après EXERESE
-petits blocs d’organes immergés dans un grand volume de liquide fixateur
–> fixateurs: acide acétique - méthanol/paraformaldéhyde/liquide de Bouin (formol + acide acétique) (! fluorescence)

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8
Q

inclusion en MO

A

-pour durcir l’échantillon pr qu’on le coupe
-après DESHYDRATATION dans des BAINS D’ALCOOL DE DEGRE CROISSANT ou de TOLUENE
-dans de la RESINE FOUDUE A 56° (parfois résines plastiques ou congélation dans N2L)

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9
Q

coupe

A

=microtomie
-coupes fines : 2 à 3 μm
-avec un MICROTOME (avance mécanique et couteau en acier)
-déposées et collées sur des lames de verre
-coupes en congélation avec un CRYOSTAT

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10
Q

coloration en MO

A

-pour augmenter les contrastes et faire apparître les différents composants
-après DEPARAFFINAGE (par la CHALEUR et des BAINS DE TOLUENE)
-et REHYDRATATION (BAIN D’ALCOOL DE DEGRE CROISSANT et EAU DISTILLEE)

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11
Q

montage

A

-après coloration puis DESHYDRATATION (BAIN D’ALCOOL DE DEGRE CROISSANT puis de TOLUENE)
-coupes montées entre lame et lamelles
-avec milieu de montage (RESINE SYNTHETIQUE) (indice de réfraction voisin de celui du verre)

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12
Q

colorants en phase aqueuse les + utilisés

A

-colorants acides ou basiques
-Hématéine-Eosine (HE)
-Hématéine-Eosine-Safren (HES)
-Trichrome de Masson
-May Grünwald Giemsa

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13
Q

colorants acide et basique

A

fixation des colorants quite à la reconnaissance de structures particulières
-colorant basique acidophile: fixation au niveau des noyaux où se trouve l’ADN
-colorant acide basophile: fixation au nv du cytoplasme où se trouve des strcutures plutôt basiques

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14
Q

hématéine-éosine-safran

A

hématéine: colorant basique qui colore noyaux en violet
éosine: colorant acide qui colore cytoplasme en rose
safran: colore fibre de collagène en jaune

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15
Q

trichrome de masson

A

-HEMATOXYLINE: noyaux en brun
-FUCHSINE ACIDE: cytoplasme en rouge
-VERT LUMIERE : fibres de collagène en vert

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16
Q

quelle coloration pour les cellules sanguines?

A

May Grünwald Giemsa

17
Q

fibres de collagène en jaune

18
Q

noyaux en brun

A

hématoxyline (trichrome de masson)

19
Q

cytoplasme en rouge

A

fuchsine acide (trichrome de Masson)

20
Q

fibres de collagène en vert

A

vert lumière (trichrome de Masson)

21
Q

noyaux en violet

A

hématéine (colorant basique)

22
Q

cytoplasme en rose

A

éosine (colorant acide)

23
Q

composés du MO standard

A

__partie mécanique avec
-potence
-tube optique
-platine
__source de lumière photonique
__partie optique avec
-oculaire
-objectif
-condenseur

24
Q

les 2 types de MO et leur diff

A

-à contraste de phase:
met en évidence les différents indices de réfraction
en révélant des différences de phases de la lumière
cellules vivantes même non colorées

-à flurorescence:
source lumineuse avec une sélection de la longueur d’onde d’excitation
et filtres pour sélection de la longueur d’onde d’émission

25
étapes de la préparation des échantillons du MET
-fixation -inclusion -coupe -contraste
26
fixation MET
fixation: glutaraldéhyde dans du tampon cacodylate (ou phosphate) post-fixation: acide osmique (tétroxyde d'osmium = OsO4
27
inclusion MET
-après déshydratation (bains d'alcool de degré croissant puis d'oxyde de propylène) -dans des résins synthétiques (Epon ou Araldite)
28
coupe MET
-coupes ultrafines (50 à 80 nm) -avec un ultramicrotome (avance thermique, couteau en diamant) -déposées sur des grilles de cuivre
29
contraste MET
-acétate d'uranyle (pour noyau, nucléole et ribosomes) -citrate de plomb (pour les mb)
30
fonctionnement MEB
-source de rayonnement = filament qui génère des électrons -lentilles = solénoïdes générant un champ électrique -receuil des électrons réfléchis par le préparation -fonctionne sous vide -résolution supérieure car l des électrons inférieure
31
étapes préparation echantillons MEB
fixation déshydratation métallisation de toutes les surfaces de l'échantillon
32
fixation MEB
-fixation: glutaraldéhyde dans du tampon cacodylate ou phosphate -pas de post-fixation
33
déshydratation MEB
-par des bains d'alcool de degré croissant puis de CO2 liquide -et par passage au point critique du CO2 (température: 32°C); pression : 73 atm) --> dessication par lyophilisation
34
métallisation de toutes les surfaces de l'échantillon
dépôt d'une couche fine (10nm) d'or-palladium
35
études in situ des constituants biochimiques
-histochimie -histoenzymologie
36
histochimie
déceler et localiser sur préparations histologiques les constituants biochimiques, à partir de réactions chimiques mettant en évidence des fonctions ou des groupements
37
les 2 exemples histochimie
1) glucides et l'acide périodique de Schiff 1 er temps: oxydation gpt glycol par acide périodique --> formation d'aldéhydes 2 eme temps: révélation des aldéhydes par le réactif de Schiff = coloration ROUGE POURPRE 2) ADN et réaction de Feulgen-Rossenbeck 1: hydrolyse de l'ADN --> mise en évidence des aldéhydes du désoxyribose 2: révélation des aldéhydes par le récatif de Schiff = coloration ROUGE POURPRE
38
principe histoenzymologie
appliquée à la cellule vivante OU COUPE A LA CONGELATION 1e temps: incubation des cell vivantes/ coupes à la congélation en présence du substrat 2e temps: révélation du produit de la réaction enzymatique sur le substrat
39
exemples histoenzymologie
1) activité estérases -la calcéine AM, substrat non fluorescent, traverse le mb cell -ds cytoplame des cell vivantes elle est estérifiée en calcéine -la calcéine est fluorescente et ne traverse pas les membranes cellulaires 2) activité des péroxydases (marquage granulocyte éosinophile) -la péroxydase en présence d'eau oxygénée oxyde la diaminobenzidine (DAB) --> précipité brun noir 3) activité ATPasique (caractérisation du type contractile des CMStSq) (sur coupes à congélation) ... Les CMstSq lentes = noires et les rapides = beige