Puce à protéine Flashcards
(31 cards)
Différents types de puce
- Forward phase array
- Sandwich phase assay
- Reverse phase assay
Forward phase array
- Protéines spécifiques fixées sur la lame
- Incubation avec échantillon biologique complexe (contenant protéines cibles)
Sandwich phase assay
- Sondes de capture fixées sur lame (anticorps monoclonaux)
- Bloquage pour éviter fixation aspécifique
- Incubation échantillon biologique et capture de la protéine d’intérêt
- Lavage
- Ajout de sondes de détection (anticorps –> formation d’une structure en sandwich (3 couches)
Reverse phase assay
- Echantillon biologique (contenant protéine cible) fixé à la puce
- Bloquage pour éviter fixation aspécifique
- Incubation avec protéine spécifique qui se fixe sur une protéine d’intérêt de l’échantillon
Application : Tests cliniques –> profil d’expression afin de montrer présence de marqueurs d’une pathologie
Comment préparer protéines recombinantes ?
Expression protéine par transformation et purification.
Expression protéines in-situ
- PISA
- NAPPA
- DAPA
PISA
Principe ?
Avantages ?
Protein In Situ Array.
- Dans une nanogoutte déposée sur lame, on a toute la machinerie transcriptionnelle/traductionnelle
- Ajout d’un ADN
- Synthèse protéine
- Protéine exprimée avec étiquette pour fixation sur la puce avec agent de capture
Avantages :
- Evite purification et dépôt
- Immobilisation et purification en une seule étape
- Intérêt pour protéines difficiles à exprimer (membranaires)
NAPPA
Principe ?
Avantage ?
Inconvénient ?
Rendement capture ?
Nucleic ADN Programmable Protein Array.
- Dans une nanogoutte déposée sur lame, on a toute la machinerie transcriptionnelle/traductionnelle
- ADN biotinylée sous forme plasmidique s’accroche à la streptavidine fixée sur la lame
- Synthèse protéine
- Protéine exprimée avec étiquette pour fixation sur la puce avec agent de capture
Avantage : conservation puce ADN
Inconvénient : Interaction protéine / ADN
Rendement capture : 10 femtomole
DAPA
Principe ?
Avantage ?
DNA array to Protein Array.
- Sandwich avec puce à ADN et puce avec agents de capture
- Entre les deux : membrane avec machinerie transcriptionnelle/traductionnelle
Avantage :
- une puce à ADN pour faire 20 puces à protéines
- évite interaction protéine / ADN
Les différents supports ?
- Supports plans
- Supports non-plans
Supports plans : lames ? caractéristiques ?
- lame de silice
- lame de verre :
- activée
- recouverte de nitrocellulose
- recouverte d’hydrogel
Caractéristiques :
- surface doit être extrêmement lisse/plane
- densité uniforme des groupements chimiques
Méthodes d’immobilisation des protéines ?
- Absorption
- Immobilisation covalente
- Capture par affinité
- Diffusion
Absorption
Principe ?
Inconvénient ?
Interaction non covalente :
- surfaces hydrophobes (nitrocellulose et polystyrène)
- surface chargée positivement (poly-L-lysine et aminosilane)
Inconvénient : Fixation avec orientation aléatoire
Immobilisation covalente
Principe ?
Avantages ?
Utilisation des amines primaire des lysines.
Couplage avec l’amine :
- lame fonctionnaliser avec COOH
- EDC réagit avec COOH –> intermédiaire amine réactif instable
- ajout NHS –> stabilisation intermédiaire en donnant ester NHS amine-réactif
- fixation covalente de la protéine par amine de lysine
Réaction Diels-Alder :
- lame d’or où il y’a autoassemblage des monocouches d’alkanethiolate
- alkanethiolate liée à groupement oligo éthylène glycol –> empêche adsorption aspécifique
- groupement oligo éthylène glycol lié à benzoquinone
- benzoquinone qui réagit avec cyclopentadiène (fixée à la protéine) par réaction Diels-Alder
Avantages :
- plus efficace et reproductible
- Diels-Alder : éloigne protéine du support
Capture par affinité
Avantage ?
- Protéine d’intérêt en fusion avec étiquette (ou sans étiquette)
- Lame fixée avec protéine à forte affinité pour l’étiquette (ou affinité avec l’anticorps)
Avantage : orientation uniforme
Diffusion
Puce avec hydrogel : protéine diffuse dedans
Dépôt des protéines ?
Inconvénient ?
Par des robots :
- Mode contact
- Mode non contact
- A flow continu
Lithographie :
- DIP-PEN nanolithographie
- Nanolithographie électronique
Inconvénient : adsorption aspécifique –> utilisation de BSA ou lait écrémé pour la caséine
Mode contact
Principe ?
Volume ?
- aiguille avec canal à l’intérieur pour mettre échantillon
- l’aiguille a une tête plate qui permet formation couche mince d’échantillon à l’extrémité de la pointe
- application sur la lame : mécanisme de tampon ancreur / impression
Volume : 0,25 uL
Mode non contact
Principe ?
Volume ?
Avantage ?
Echantillon déposé sans contact sur la surface
- vaporisation de l’échantillon avec des micro-gouttelettes (par jet d’encre, pulsation piézoélectrique ou électrospray)
Volume : centaine de pL
Avantage :
- évite d’endommager optique de la puce : pratique pour SPR car réseau optique proche de la lame
A flow continue
Principe ?
Volume ?
Avantages ?
Technologie qui utilise va et vient pour faire circuler la solution de protéine sur une zone bien précise.
Volume : bine plus bas que contact et non contact
Avantages :
- possibilité d’utiliser des solutions plus diluées
- aucune contamination des spots à proximité
- peut faire modification chimique sur le spot car on peut faire circuler ce que l’on veut
Dip-pen nanolithographie
Principe ?
Avantage ?
- stylo avec une pointe d’un microscope à force atomique
- l’encre c’est la solution biologique que l’on veut déposer
- en déplaçant la pointe sur la lame, formation d’un ménisque d’eau et les molécules se déposent
- l’écriture est séquentielle (pixel par pixel)
Avantage :
- peut faire multiplexage (déposer plusieurs protéines sur même support)
- on peut travailler dans des conditions ambiantes
- diminution volume échantillon
Nanolithographie électronique
Principe ?
Avantage ?
Application d’impulsion de potentiel entre une pointe métallisée d’un AFM et la couche métallique (support)
Avantage :
- en une seule étape
Détection : différentes façon de faire marquage
- Marquage direct : toutes les protéines dans un échantillon sont marquées
- Marquage indirect : anticorps secondaire marqué
- Marquage Immunotest en sandwich avec deux anticorps : protéine intérêt fixé en sandwich puis ajout anticorps secondaire marqué
Différentes façon de détecter ?
- Fluorescence
- Radioactivité
- Résonance Plasmonique de Surface
- Microscopie à Force Atomique
- Spectrométrie de masse
Fluorescence
Principe ?
Modes d’analyse ?
Augmenter sensibilité ?
Utilisation marqueur fluorescent.
Deux mode d’analyse :
- capture d’un instantané avec caméra CCD (Charged Coupled Device)
- lecture de la puce point par point à l’aide d’un tube photomultiplicateur
On peut augmenter sensibilité de détection de 3 façon :
- Guide d’onde planaire
- Nanocristaux
- Amplification d’ADN circulaire