TPs Flashcards

1
Q

∞ On vous donne un tube contenant un mélange de deux espèces bactériennes (1 Gram + et 1 Gram -). Vous désirez isoler la souche bactérienne Gram - afin de faire des tests d’identifications. Pour ce faire, vous striez le mélange sur une gélose :

a. sang.

b. ordinaire.

c. MacConkey.

d. mannitol sel.

A

c. MacConkey.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
2
Q

Les Enterobacteriaceae sont généralement des bactéries

a. Aérobiques

b. Anaérobiques

c. Anaérobiques facultatives

d. Hypoxiques

A

c. Anaérobiques facultatives

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
3
Q

Suite à une incubation de 24h à 35°C, vous observez 118 colonies sur une gélose nutritive. Sachant que vous avez étalé 0,2mL d’un mélange bactérien (dilution 10-5) sur cette gélose, quel est le nombre d’unités viables (NUV) par mL du mélange bactérien de départ?

a. 1.18 x 108 UV/mL

b. 2,36 x 108 UV/mL

c. 1.18 x107 UV/mL

d. 5,9 x107 UV/mL

A

d. 5,9 x107 UV/mL

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
4
Q

∞ Un bouillon lactosé est ensemencé avec une entérobactérie inconnue. Après incubation, le bouillon vire au jaune et il y a une bulle dans le tube de Durham. Que signifie ce résultat ?

a. Il n’y a pas eu de fermentation du lactose, mais le mannitol a fermenté, sans dégagement de gaz.

b. Il n’y a pas eu de fermentation du lactose, mais le mannitol a fermenté, avec dégagement de gaz.

c. Il n’y a eu ni fermentation du lactose, ni dégagement de gaz.

d. Il y a eu fermentation du lactose et dégagement de gaz

e. Il y a eu fermentation du lactose, sans dégagement de gaz.

A

d. Il y a eu fermentation du lactose et dégagement de gaz

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
5
Q

∞ À la suite de tests biochimiques sur une souche d’entérobactérie inconnue vous obtenez les résultats suivants:

Bouillon lactosé: Le bouillon est Violet

Gélose sulfure, indole, motilité: Culot noir avec croissance dans le milieu loin de la ligne d’inoculation. L’ajout du réactif de Kovacs produit une anneau jaune/incolore.

Gélose citrate: La gélose est bleue

Gélose à l’urée de Christensen: La gélose est rose bonbon

Gélose phénylalanine désaminase: La pente de la gélose est jaune après l’ajout de FeCl3.

A

Citrobacter freundii

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
6
Q

∞ La gélose mannitol-sel est différentielle pour quel caractère ?

a. L’hydrolysation de l’urée en ammoniac.

b. La présence de la coagulase.

c. La dégradation du mannitol.

d. La fermentation du lactose.

e. La présence de l’enzyme catalase.

A

c. La dégradation du mannitol.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
7
Q

Que signifie le précipité noir qui peut se former dans la gélose sulfure, indole, motilité (SIM) ?

a. Le tryptophane est dégradé en indole.

b. Il y a production de sulfure d’hydrogène (H2S).

c. La phénylalanine est désaminée en acide phénylpyruvique.

d. Rien, c’est assurément dû à une erreur de manipulation.

e.L’urée est dégradée en ammoniac.

A

b. Il y a production de sulfure d’hydrogène (H2S).

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
8
Q

∞ Une gélose sulfure, indole, motilité (SIM) est ensemencée avec une entérobactérie inconnue. Après incubation et ajout du réactif de Kovacs, un composé rouge vif est formé. Que signifie ce résultat ?

a. La bactérie ensemencée est motile.

b. Le glucose (seule source de carbone disponible) a été utilisé.

c. Aucune de ces réponses.

d. Il y a production de sulfure d’hydrogène.

e. L’indole a été produit à partir du tryptophane disponible.

A

e. L’indole a été produit à partir du tryptophane disponible.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
9
Q

∞ Quel est l’agent sélectif dans la gélose mannitol-sel ?

a. Le violet de cristal.

b. La haute teneur en NaCl (7,5%).

c. Le lactose.

d. Le mannitol

e. Les sels biliaires.

A

b. La haute teneur en NaCl (7,5%).

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
10
Q

∞ Vous préparez un frottis sur lame d’une souche bactérienne provenant d’une gélose MacConkey. Vous effectuez ensuite une coloration de Gram. Lors de l’observation microscopique à un grossissement de 1000X, vous notez la présence de bacilles de couleur violette. Comment expliquer ce résultat ?

a. L’étape de la décoloration à l’alcool 95% n’a pas été complétée, ce qui empêche la contre-coloration des bactéries Gram négatif à la safranine.

b. La safranine ne colore que les bactéries Gram négatif, c’est donc normal qu’une bactérie ayant poussé sur gélose MacConkey ne soit pas sensible à ce colorant.

c. On a sûrement oublié l’étape de la solution de Lugol, qui permet de mettre la coloration à la safranine en évidence.

d. Le violet de cristal colore toutes les cellules, c’est normal que le frottis soit violet.

A

a. L’étape de la décoloration à l’alcool 95% n’a pas été complétée, ce qui empêche la contre-coloration des bactéries Gram négatif à la safranine.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
11
Q

∞ Pourquoi est-il important d’effectuer un contrôle négatif lors de toute expérience au laboratoire ?

a. Pour confirmer que les réactifs, produits et techniques utilisés sont adéquats pour répondre à la question expérimentale.

b.
Le contrôle négatif est facultatif, il ne fournit aucune information essentielle.

c. Pour confirmer l’application adéquate des techniques de travail et l’absence de contaminants dans les réactifs utilisés.

d. Pour déterminer le seuil acceptable de contamination dans l’expérience effectuée.

A

c. Pour confirmer l’application adéquate des techniques de travail et l’absence de contaminants dans les réactifs utilisés.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
12
Q

Quel milieu de culture est-il préférable d’utiliser pour effectuer l’examen de la morphologie coloniale d’une souche bactérienne ?

a. Un bouillon nutritif.

b. Une gélose sélective-différentielle.

c. Une gélose différentielle.

d. Une gélose sang.

e. Une gélose nutritive neutre.

A

e. Une gélose nutritive neutre.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
13
Q

On doit déterminer le nombre d’unités viables dans une suspension bactérienne concentrée. Des dilutions en série de 10-1 à 10-4 ont été préparées et un volume de 0,1 mL de la dilution 10-4 a été étalé sur une gélose nutritive. Après incubation à 35ºC pendant 24 heures, il n’y a aucune croissance bactérienne. Qu’est-ce qui est la meilleure chose à faire pour déterminer le nombre d’unités viables dans cette suspension bactérienne ?

a. Étaler 0,1 mL de la dilution 10-3 sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Si des colonies bactériennes sont présentes après l’incubation, énumérer le NUV/mL. Sinon, répéter l’opération avec la dilution 10-2.

b. Déclarer que la concentration de la suspension est de 0 NUV/mL.

c. Compter le nombre de colonies dans la suspension bactérienne initiale et diviser cette valeur par son volume afin d’obtenir le NUV/mL.

d. Étaler 0,1 mL de la suspension bactérienne initiale sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Énumérer ensuite le NUV/mL, peu importe le nombre de colonies bactériennes à la surface de la gélose.

A

a. Étaler 0,1 mL de la dilution 10-3 sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Si des colonies bactériennes sont présentes après l’incubation, énumérer le NUV/mL. Sinon, répéter l’opération avec la dilution 10-2.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
14
Q

Lequel des paramètres suivants peut être utilisé pour caractériser la concentration bactérienne d’un tube de bouillon nutritif ensemencé avec une souche bactérienne ?

a. Le nombre de colonies.

b. Le nombre de colonies, divisé par le volume de la suspension.

c. La turbidité du milieu de culture.

d. Le changement de couleur de l’indicateur de pH.

A

c. La turbidité du milieu de culture.

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
15
Q

∞ Vous recevez une culture pure sur gélose sang d’une souche bactérienne inconnue. Vous observez la présence d’une lyse partielle de couleur verdâtre dans les zone où la croissance bactérienne est abondante. Toutefois, vous ne voyez pas d’hémolyse au niveau des colonies isolées. Que noterez vous dans votre cahier de laboratoire en ce qui concerne le caractère hémolytique de cette souche?

a. Alpha hémolytique

b. Impossible à déterminer

c. Beta hémolytique

d. Gamma hémolytique

A

d. Gamma hémolytique

How well did you know this?
1
Not at all
2
3
4
5
Perfectly
16
Q

Les bactéries β-hémolytiques causent la lyse partielle des globules rouges.

a. True

b. False

A

b. False - Bêta (β)‑hémolyse - hémolyse complète des globules rouges - zone incolore (transparente) autour des colonies isolées.

17
Q

Une bactérie qui est Gram + est nécessairement un coccus.

a. True

b. False

A

b. False

18
Q

∞ Les bactéries α-hémolytiques causent la lyse complète des globules rouges.

a. True

b. False

A

b. False. Alpha (α)-hémolyse : hémolyse partielle (incomplète) des globules rouges - zone verdâtre autour des colonies isolées

19
Q

Avec quoi réagit le chlorure ferrique (FeCl3) pour produire une coloration verte à la surface du milieu lors d’un test biochimique avec une gélose phénylalanine-désaminase (PAD)?

a. L’acide aminé phénylalanine.

b. Les désaminases produites par les bactéries.

c. L’acide phényl-pyruvique.

d.Toutes ces réponses.

A

c. L’acide phényl-pyruvique.

20
Q

Quel(s) test(s) pouvez-vous effectuer pour déterminer la motilité d’une souche bactérienne inconnue?

a.Coloration de Schaeffer-Fulton

b. Observation à l’état frais.

c. Ensemencement d’une gélose molle en tube.

d. Ensemencement d’une gélose SIM en tube.

e. Coloration au bleu de coton.

A

b. Observation à l’état frais.
d. Ensemencement d’une gélose SIM en tube.,

21
Q

Comment appel-t-on les sites antigéniques reconnus par les anticorps?

a. Immunoglobulines

b. Sites d’Ouctherlony

c. Sites de séropositivité

d. Épitopes

A

d. Épitopes

22
Q

Une équipe qui a effectué la technique d’Ouchterlony obtenu les résultats suivants :

En fonction de la position des lignes de précipités observées entre le puits central contenant l’anti-ASB (Ac) et les 4 puits périphériques, déterminer la dilution d’ASB que contenait chaque puits parmi les options suivantes : 1/10; 1/20; 1/40; Non-dilué

a. Puit A= 1/10 ; Puit B= 1/20 ; Puit C= 1/40 ; Puit D= Non-dilué

b. Puit A= 1/20 ; Puit B= Non-dilué ; Puit C= 1/40; Puit D= 1/10

c. Puit A= 1/10 ; Puit B= Non-dilué ; Puit C= 1/40; Puit D= 1/20

d. Puit A= 1/20 ; Puit B= 1/10 ; Puit C= 1/40 ; Puit D= Non-dilué

e. Puit A= 1/10 ; Puit B= 1/40; Puit C= Non-dilué; Puit D= 1/20

A

c. Puit A= 1/10 ; Puit B= Non-dilué ; Puit C= 1/40; Puit D= 1/20

23
Q

Une équipe qui a effectué la technique d’Ouchterlony a obtenu les résultats suivants :

Qu’est-ce qui explique l’absence de précipité entre le puits central et le puits C?

a. La réaction est en postzone; Il y a trop d’anticorps; Tous les sites de liaisons antigéniques sont liés à un anticorps, ce qui empêche la formation de réseau.

b. La réaction est en postzone; Il y a trop d’antigène; tous les sites de liaison des anticorps sont occupés par un antigène, ce qui empêche les liaisons entre complexes.

c. La réaction est en prozone; Il y a trop d’anticorps; Tous les sites de liaisons antigéniques sont liés à un anticorps, ce qui empêche la formation de réseau.

d. La réaction est en prozone; Il y a trop d’antigène; tous les sites de liaison des anticorps sont occupés par un antigène, ce qui empêche les liaisons entre complexes.

e. La réaction est en équivalence; Il y a la même quantité d’anticorps et d’antigènes, ce qui empêche la formation de réseau.

A

c. La réaction est en prozone; Il y a trop d’anticorps; Tous les sites de liaisons antigéniques sont liés à un anticorps, ce qui empêche la formation de réseau.

24
Q

À quel microorganisme associez-vous cette image?

a. Rhizopus nigricans

b. Penicillium notatum

c. Aspergillus niger

d. Saccharomyces cerevisiae

A

a. Rhizopus nigricans

25
Q

À quel virus associez-vous cette image?

a. Le virus de l’immunodéficience humaine (HIV-1)

b. Le virus de la polio

c. Le virus Herpes

d. L’adénovirus

A

a. Le virus de l’immunodéficience humaine (HIV-1)

26
Q

Quelle est la porosité des filtres les plus couramment employées pour la filtration bactériologique?

a. 0,30µm et 0,22µm

b. 0,45µm et 0,30 µm

c. 0.01 µm

d. 0,45µm et 0,22µm

A

d. 0,45µm et 0,22µm

27
Q

Compléter l’énoncé :

Les substances chimiques et les conditions physiques qui peuvent empêcher temporairement la croissance des bactéries sont dites…

A

Bactériostatiques

28
Q

Placer les antibiotiques suivants en ordre croissant en fonction de leur concentration minimale inhibitrice :

A

b. A < D < B < C

29
Q

Quel microorganisme avez-vous utilisé en combinaison avec Staphylococcus aureus pour mettre en évidence la production d’antibiotique?

A

Penicillium notatum

30
Q

Le(s) quel(s) des facteurs suivants influence(nt) le diamètre de la zone d’inhibition lors d’antibiogrammes faisant appel à une méthode diffusimétrique?

A
  1. La taille de la molécule antibiotique
  2. L’hydrophobicité de la molécule antibioque
  3. L’abondance de l’inoculum bactérien
  4. L’épaisseur de la gélose
31
Q

Vrai ou faux. La présence d’une zone d’inhabitation autour d’un disque de Vancomycine (30mg) sur une gélose ensemencée avec une souche bactérienne signifie que cette dose d’antibiotique peut être utilisé in vivo pour traiter une infection.

A

False

32
Q

Vrai ou faux. Si deux antibiotiques différents ont des zones d’inhibition de diamètre égal, cela signifie qu’ils ont la même concentration minimale inhibitrice.

A

False

33
Q

Sur une gélose ensemencée avec E. coli, vous comptez 37 plages de lyse. Sachant que 750ul d’une dilution 10-9 ont été inoculé dans cette culture bactérienne avant la mise en pétri, déterminez le nombre d’unités formatrices de plage (UFP) par ml la préparation phagique de départ.

A

4,93 x 1010 UFP/ml

(nb de plages de lyse/volume X dilution)

34
Q

Choisissez la meilleur réponse:

Vous voulez déterminer si un microorganisme que vous avez récemment découvert peut produire un antibiotique en utilisant la méthode de Kirby-Bauer. Pour ce faire, vous l’inoculez à proximité d’une souche de S. aureus sur une gélose Mueller-Hinton. Après incubation, vous notez une absence de croissance qui se limite à la zone autour de l’endroit où vous avez inoculer votre microorganisme. Ceci signifie que:

a. Ce microorganisme a produit un antibiotique pour lequel la bactérie est résistante.

b. L’absence de substance inhibitrice.

c. Nous ne pouvons pas tirer de conclusion, car ce phénomène pourrait être dû à une grande quantité de déchets métaboliques produits par ce microorganisme.

d. Le milieu de culture utilisé est inadéquat.

e. Ce microorganisme a produit un antibiotique ayant un effet inhibiteur sur la bactérie.

A

e. Ce microorganisme a produit un antibiotique ayant un effet inhibiteur sur la bactérie.

35
Q

Sur un antibiogramme, on observe pour deux antibiotiques différents des zones d’inhibition d’un diamètre égal. On peut alors dire que :

A

Les deux antibiotiques ont une activité inhibitrice sur la bactérie in vitro

36
Q

Pourquoi est-il important d’effectuer un contrôle positif lors de toute expérience au laboratoire ?

A

Pour confirmer que les réactifs, produits et techniques utilisés sont adéquats pour répondre à la question expérimentale.

37
Q

On doit déterminer le nombre d’unités viables dans une suspension bactérienne concentrée. Des dilutions en série de 10-1 à 10-4 ont été préparées et un volume de 0,1 mL de la dilution 10-4 a été étalé sur une gélose nutritive. Après incubation à 35ºC pendant 24 heures, il n’y a aucune croissance bactérienne. Qu’est-ce qui est la meilleure chose à faire pour déterminer le nombre d’unités viables dans cette suspension bactérienne ?

A

Étaler 0,1 mL de la dilution 10-3 sur gélose et incuber à 35ºC pendant 24 heures. Si des colonies bactériennes sont présentes après l’incubation, énumérer le NUV/mL. Sinon, répéter l’opération avec la dilution 10-2.

38
Q

Vous effectuez un antibiogramme Kirby-Bauer avec un échantillon bactérien afin de déterminer le bon traitement antibiotique. Vous testez une gamme de trois antibiotiques : pénicilline, vancomycine et ciprofloxacine. Après incubation à 35°C pendant 24 heures, vous notez des zones d’inhibition de croissance variables autour des disques de vancomycine et de ciprofloxacine, mais pas autour du disque de pénicilline. Vous déterminer donc que l’échantillon bactérien est sensible à :

a. La vancomycine et la ciprofloxacine.

b. La pénicilline.

c. La ciprofloxacine.

d. La vancomycine.

e. Les informations fournies ne sont pas suffisantes pour le déterminer.

A

e. Les informations fournies ne sont pas suffisantes pour le déterminer.