Électrophorèse Flashcards

1
Q

C’est quoi l’électrophorèse?

A

L’électrophorèse, la migration d’un ion dans un champ électrique, est utilisée dans les séparations analytiques des molécules biologiques

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2
Q

Force électrique

A

Pour qu’une molécule puisse migrer dans un champ électrique, Félect > Ffriction

Selon les lois électrostatiques, la Félectrique = qE
(=ion avec charge q dans un champ électrique d’intensité E)

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3
Q

Force de friction + Coefficient de friction

A

La migration électrophorétique de l’ion à travers de la sln est opposée par une force de friction : Ffriction=vf
(vitesse de migration / coefficient de friction)

Coefficient de friction donne une mesure de la résistance exercée par la sln sur l’ion pendant sa migration

Dépend de: taille, forme de l’ion + viscosité de la sln

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4
Q

Mobilité électrophorétique

A

Chaque ion se déplace avec une vitesse caractérisée par une mobilité électrophorétique, u=V/E = q/f

Cette équation indique que les protéines à leur point isoélectrique (q=0) ont une mobilité électrophorétique nulle

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5
Q

Quelle est la méthode d’électrophorèse la + couramment utilisée?

A

Électrophorèse en zones

= une technique dans laquelle l’échantillon est contraint à se déplacer dans une phase solide, comme le papier filtre, la cellulose ou un gel

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6
Q

À quoi sert l’électrophorèse en zones?

A

Par cette technique…
1. On élimine largement l’agitation provoqueée par la convection, un facteur limitant du point de vue résolution
2. Cette technique requiert une qtt faible de matériel permettant la migration des composantes en bandes discrètes.

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7
Q

Électrophorèse sur gel

Expliquer le principe

A
  • 1 des techniques les + puissantes et faciles dans la séparation des macromolécules
  • Gels d’usage commun = agarose + polyacrylamide, ont des pores de taille des protéines à séparer
  • Séparation moléculaire basée sur: filtration sur gel + mobilité électrophorètique des molécules
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8
Q

Électrophorèse sur gel

Pourquoi les gels d’électrophorèse retardent les molécules de taille + grande?

A

Inverse de la filtration par gel

Pcq dans la filtration par gel, il y a des espaces pour le solvant entre les billes de gel, ce qui n’existe pas dans l’électrophorèse sur gel

La migration des grandes molécules est retardée par rapport aux molécules plus petites

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9
Q

Électrophorèse par gel de polyacrylamide - fabrication

A

PAGE

Gels sont fabriqués à partir d’une polymérisation d’acrylamide + N,N’-méthylènebisacrylamide dans un tampon

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10
Q

Caractéristiques/Étapes de l’électrophorèse par gel de polyacrylamide

A
  1. Avant que le mélange rxionel n’ait durci, il est coulé dans un récipient formé de 2 plaques de verres et polymérisera en une couche mince de gel
  2. Les échantillons sont déposés ds les puits
  3. Le tampon est le mm dans les réservoirs du haut et du bas (pH=9 pr que tt les prot. aient une charge négative)
  4. Un courant continu de 100 à 200V parcourt le gel pendant la migration

Les protéines migrent vers l’anode + selon leur ratio charge/masse

Plus le gel est long,meilleure est la finesse des bandes et de la résolution

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11
Q

Rôle électrophorèse en pH discontinu

A

Afin d’augmenter la résolution et donc restreindre les protéines dans des bandes plus minces, le gel peut être modifié en utilisant 2 gels dans des tampons différents:
1. Gel de séparation, préparé comme autre gel
2. Gel de concentration, qui surmonte le gel de séparation et qui est de plus haute porosité

  • Le tampon ds le réservoir du bas et celui du gel de séparation sont identiques
  • Le tampon du gel de concentration a un pH de 2 unités de moins
  • Le pH du tampon dans le réservoir supérieur doit contenir un acide faible (glycine) et son pH est ajusté près de celui du réservoir inférieur
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12
Q

Processus de l’électrophorèse en pH discontinu

A
  1. Glycine est de charge neutre, augmente la résistance au courant électrique, loi de Ohm (E=IR) résistance R plus élevée avec un courant I constant = augmentation du champ électrique E (augmentation de la vitesse de migration des protéines)
  2. Passage d’un gel de 5% à 10% acrylamide ralenti la migration électrophorétique à la jonction des 2 gels (compaction des protéines en fines bandes)
  3. Glycine devient chargée négativement, résistance électrique R diminue, diminution du champ électrique E (diminution vitesse de migration des protéines, séparation des protéines en fct du ratio charge/masse)
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13
Q

SDS-PAGE
C’est quoi

A
  • Dépend du fait que savons/détergents, avec leurs interactions hydrophobes, peuvent dénaturer la structure de la prot
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14
Q

Mécanisme d’action du Sodium dodecyl sulfate (SDS) - chaîne polypeptide

A
  • = détergent puissant
  • SDS se lie de façon importante aux protéines; conc de 0,1% de SDS suffisante pour saturer par liaison avec une chaîne polypeptide à un taux de 1 molécule de détergent par 2 résidus d’AA
  • En présence d’SDS, les prot contenant des sous-unités sont désunies et la chaîne polypeptide de chc sous-unité adopte une conformation étendue
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15
Q

Mécanisme d’action du Sodium dodecyl sulfate (SDS) - Charge négative

A
  • La forte charge - apportée par SDS masque la charge intrinsèque des protéines
  • Conséquemment, le rapport charge/masse sera le mm pour tt les protéines de mm masse et la séparation électrophorétique du gel avec du SDS dépendra uniquement du phénomère de gel-filtration par les pores du gel
  • Cette méthode donne la meilleure résolution et les bandes sont les + résolues de tt les méthodes d’analyse
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16
Q

2 avantages du gel SDS-PAGE par rapport à l’électrophorèse ordinaire

A
  1. SDS dissous les agrégats et les particules insolubles qui peuvent causer des problèmes en bloquant les pores du gel
  2. La mobilité électrophorétique a une relation directe avec le poids moléculaire
17
Q

Relation entre: masses moléculaires & leur mobilité électrophorétique

A

En utilisant des marqueurs moléculaires, il est possible de calibrer la migration sur gel par rapport aux poids moléculaires

  • on peut obtenir une relation linéaire entre la mobilité électrophorétique et le log du poids moléculaire
18
Q

Approches pour la visualisation es protéines dans les gels

A
  • coloration avec bleu de Coomassie brillant
  • Coloration au nitrate d’argent
  • Autodiographie (si les prot sont marquées avec un isotope radioactif comme S35 ou C14)

Ces approches détectent tt les protéines sur le gel

Une approche plus spécifique consiste à détecter la prot d’intérêt avec un anticorps qui reconnaît cette protéine: immunobuvardage