La chromatographie Flashcards

1
Q

Quelles sont les deux phases utilisées par la chromatographie ?

A

La phase mobile et la phase stationnaire.

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2
Q

Qu’est-ce qui permet le ralentissement des substances lors de l’élution chromatographique ?

A

Les interactions avec la phase stationnaire selon les propriétés respectives des substances.

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3
Q

Quelles sont les propriétés utilisées pour effectuer le fractionnement ?

A

Les interactions ioniques, la taille et la spécificité ?

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4
Q

Quelle méthode chromatographique utilise-t-on pour effectuer un fractionnement basé sur les interactions ioniques ?

A

Chromatographie par échange d’ions.

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5
Q

Quelle méthode chromatographique utilise-t-on pour effectuer un fractionnement basé sur la taille ?

A

La chromatographie par gel-filtration.

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6
Q

Quelle méthode chromatographique utilise-t-on pour effectuer un fractionnement basé sur la spécificité ?

A

La chromatographie par affinité.

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7
Q

Quelle charge porte les groupes d’un échangeur de cations (R) ?

A

Négative.

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8
Q

Quelle charge porte les groupes d’un échangeur d’anions (R) ?

A

Positive.

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9
Q

Comment fonctionne brièvement un échangeur d’ions ?

A

Les ions liés électrostatiquement à un support insoluble (R) sont remplacés de manière réversible par des ions en solution.

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10
Q

Pourquoi est-ce que l’affinité des protéines pour l’échangeur d’ions dépend du pH ?

A

Puisque la charge nette des protéines dépend du pH.

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11
Q

Pourquoi est-ce que l’affinité des protéines pour l’échangeur d’ions dépend de la nature et des concentrations des autres ions en solution ?

A

Ceux-ci vont aussi compétitionner pour les sites de liaison de l’échangeur d’ions.

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12
Q

De quoi dépend intrinsèquement l’affinité de l’échangeur (R) pour leur protéine en chromatographie ?

A

La nature de leur matrice et le type de groupement fonctionnel utilisé pour favoriser l’attachement de la protéine.

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13
Q

Qu’est-ce qu’une matrice en chromatographie ?

A

Ce sont des polymères insolubles préparés sous formes de billes, appelées familièrement résine. (cellulose ou agarose)

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14
Q

Que peut-on dire sur la porosité de la matrice chromatographique ?

A

Le réseau des pores génère une surface beaucoup plus large que la surface de l’extérieur de la bille.

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15
Q

Qu’est-ce qu’un échangeur d’ions forts comparé à un échangeur d’ions faible ?

A

L’échangeur d’ions fort reste chargé malgré une grande variation de pH (3-10), tandis que l’échangeur faible reste chargé dans une zone plus restreinte.

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16
Q

Comment est-ce que les échangeurs d’ions exploitent une charge nette sur une protéine ?

A

Par attraction électrostatique.

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17
Q

Quels sont les groupements chimiques greffés sur les matrices et leur charge/force ?

A

QAE (anionique fort), sulfonates (cationique fort), DEAE (anionique faible) et CM (cationique faible)

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18
Q

Qu’est-ce que la protéine doit déplacer pour s’attacher à l’échangeur d’ions ?

A

Les contre-ions.

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19
Q

Qu’est-ce que la protéine doit posséder pour pouvoir s’attacher à l’échangeur d’ions ?

A

Une plus grande affinité pour l’échangeur que pour les contre-ions qu’elle doit déplacer.

20
Q

Pour permettre à la protéine de s’attacher à l’échangeur, que contrôle-t-on en solution ?

A

Le pH et la concentration saline.

21
Q

Avec quoi est lavé la colonne lors de la chromatographie par échange d’ions ?

A

Une solution tampon.

22
Q

Que peut-on dire sur la vitesse de migration des protéines par rapport à leur affinité avec l’échangeur d’ions ?

A

Plus l’affinité de la liaison d’une protéine pour l’échangeur est forte, plus elle sera retardée.

23
Q

Que peut-on faire pour augmenter la vitesse d’élution d’une protéine ?

A

L’utilisation d’un tampon de concentration saline (KCl ou NaCl) supérieur au tampon de lavage.

24
Q

Qu’est-ce qu’une élution fractionnée ?

A

C’est l’ajout drastique d’une concentration saline. Cette augmentation permet d’éluer les protéines dépendamment de leur affinité avec le sel par plateau. Lorsque toutes les protéines avec l’affinité pour une certaine concentration en sel sont éluées, on augmente la concentration saline.

25
Q

Qu’est-ce que l’élution par gradient de concentration.

A

Au lieu de former des plateaux comme avec l’élution fractionnée, on augmente linéairement et continuellement la concentration en sel.

26
Q

Quel est le principe de la chromatographie par gel filtration ou tamis moléculaire ?

A
  1. La phase stationnaire (résine) consiste en un réseau de polymères réticulés possédant des, fabriqués sous forme de billes. 2. Il y a une limite d’exclusion laissant seulement passer les petites molécules dans les pores. 3. Les molécules plus grandes ne pénètrent pas dans les pores que les protéines retenues dans les pores des billes.
27
Q

Quelles sont les matrices utilisés pour la chromatographie par gel-filtration ou tamis moléculaire ?

A

La dextrane, l’agarose ou le polyacrylamide.

28
Q

De quoi dépend la porosité des gels ?

A

De la masse moléculaire du polymère et du nombre de liaison croisées qui se forment entre les molécules du polymères (pontages).

29
Q

Dans une chromatographie gel-filtration ou tamis moléculaire, quelle taille de protéine est éluée en premier ?

A

Les plus grosses.

30
Q

Qu’est-ce que le volume d’élution d’une protéine (Ve) ?

A

C’est le volume de solvant nécessaire pour éluer la protéine après son dépôt sur la colonne. Vt=Vx+V0. Il est possible de mesurer le volume d’élution relatif (Ve/V0)

31
Q

À quoi sert de mesurer le volume d’élution relatif ?

A

Estimer la masse moléculaire de la protéine. Il existe une relation linéaire entre le volume d’élution relatif d’une protéine et le logarithme de sa masse moléculaire.

32
Q

Que signifie les paramètres Vx, V0 et Vt ?

A

Vx volume occupé par les billes, V0 volume mort (solvant entourant les billes) et Vt le volume total de la colonne.

33
Q

Que permet la dialyse ?

A

Elle permet de séparer les molécules selon leurs tailles grâce à l’utilisation de membranes semi-perméables. (cellulose)

34
Q

Quelles tailles de molécules passent en premier lors d’une dialyse ?

A

Les plus petites.

35
Q

Pourquoi est-ce que la dialyse est fréquemment utilisée ?

A

Pour éliminer les sels présents dans un échantillon de protéine obtenu après la précipitation.

36
Q

Comment fonctionne la chromatographie sur colonne filtre ?

A

En centrifugeant, les molécules de tailles inférieures aux pores du filtre passent alors que les autres restent. On peut ainsi isoler les protéines selon leur taille.

37
Q

Qu’est-ce que la chromatographie par affinité ?

A

Un ligand qui lie spécifiquement à la protéine d’intérêt, est fixé de manière covalente à une matrice poreuse et inerte. Les protéines se s’y liant pas passe à travers la colonne alors que la protéine d’intérêt y reste.

38
Q

Comment récupère-t-on la protéine d’intérêt lors d’une chromatographie par affinité ?

A

On récupère la protéine désirée sous une forme très pure en modifiant les conditions d’élution pour faire en sorte que la protéine se détache du ligand. (changement de pH, force ionique, température ou ligands libres)

39
Q

La chromatographie d’affinité utilise des propriétés physiques ou chimiques ?

A

Chimiques.

40
Q

Quelle est l’avantage de la chromatographie d’affinité au niveau du temps ?

A

Rapide, en une seule étape.

41
Q

Que signifie Kd ?

A

La constante de dissociation (une mesure de l’affinité protéine-ligand)

42
Q

De quoi dépend l’efficacité de l’interaction protéine ligand (chromatographie d’affinité) ?

A

Du Kd, de la concentration de la protéine dans l’extrait et du degré de liaison du ligand à la matrice.

43
Q

Quelles sont les caractéristiques d’une bonne matrice pour la chromatographie d’affinité ?

A

Chimiquement inerte, avoir une grande porosité et présenter de nombreux groupes fonctionnels capable de former des liens avec les ligands.

44
Q

Comment fait-on pour éviter le problème de l’interférence stérique avec la matrice de l’agarose en présence de bromure de cyanogène ?

A

Avec une bras espaceur.

45
Q

Comment se fait la liaison du ligand à la matrice ?

A
  1. L’agarose réagi avec le bromure de cyanogène qui produit un intermédiaire activé et stable. 2. Le ligand réagit avec l’agarose activé pour donner un produit lié par covalence.
46
Q

Quelles sont les méthodes utilisées pour détecter quantitativement et spécifiquement les protéines dans les différentes fractions de l’éluats ?

A

Absorption des protéines dans l’UV (280 nm), essai calorimétrique, essai enzymatique, détection de la protéine sur gel SDS-PAGE et détection de la protéine avec un anticorps.