Les Techniques D’explorations Flashcards

1
Q

Élecrophorèse pulsée

A
  • pour les grands segments d’ADN car sur gel d’agarose le critère de taille ne peut plus être pris en compte
  • donc champ pulsé = à intervalle régulier, la polarité du courant est inversé et le temps que les fragments d’ADN fassent l’aller-retour dépend de leur taille
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2
Q

Immunonéphélémétrie

A
  • utilisation d’un Ac dirigé vs l’Apo(a) qui vont se complexer et former des particules en suspension
  • faisceau lumineux est envoyé ce qui diffuse le faisceau et on mesure ensuite son intensité
  • le phéno de diffusion dépend de la taille
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3
Q

Méthode ELISA

A
  • utilisation d’un Ac de capture et un Ac de révélation
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4
Q

Isoélectrofocalisation

A
  • électropho sur gel de polyacrylamide sur un gradient de pH
  • les ApoE vont migrer jusqu’à leur pHi
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5
Q

Ultracentrifugation

Technique de séparation ?

A

Séparation par densité

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6
Q

Ultracentrifugation

Mécanisme ?

A

Accélération qui s’exerce vers l’extérieur et qui est prépondérante à l’agitation moléculaire donc séparation des molécules

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7
Q

Ultracentrifugation

Les 2 types ?

A

=> Ultracentrifugation en séquentielle :
Ajustement de la densité grace à des sels
On récupère les LP les unes apres les autres

=> Ultracentrifugation en gradient :
On met des solutions salines de différentes densité, on fait un seul tour et on peut récupérer les LP

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8
Q

Ultracentrifugation avantages

A

—> PREPARATiON des LP sur gros ou petit volumes

—> Plusieurs échantillons en même temps

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9
Q

Ultracentrifugation inconvénients 5

A

—> Pas de séparation des CM des LDL

—> Pb de densité de la Lp(a)

—> Des apo peuvent se décrocher

—> Prend du temps surtout la séquentielle

—> Volume important nécéssaire pcq rendement pas ouf

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10
Q

Électrophorèse sur polyacrylamide type de séparation ?

A

Séparation par taille

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11
Q

Les 3 types d’Électrophorèse sur polyacrylamide

A
  1. PAGGE (taille et forme)
    Étude de la taille des LP :
    - Les LDL sont plus gde que les HDL elles sont bloquées vites et reste au sommet
    - HDL zones larges et pas LDL (pattern A ou B)
    - Que pour HDL et LDL pcq VLDL et CM trop gros
  2. PAGE SDS
    Étude des Apo : gel de densité uniforme
    Les prot deviennent négative car le SDS s’est fixé dessus donc pas de séparation en fonction de la charge
    On obtient log(M) = f(mobilité relative)
  3. PAGE en non dénaturante : charge, taille forme
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12
Q

Électrophorèse sur polyacrylamide avantages 4

A

“—> Petit V d’échantillon

—> Pls échantillons en même temps

—> Préparation d’Apo = méthode préparative

—> Pas de recoupement de la Lp(a) “

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13
Q

Électrophorèse sur polyacrylamide inconvénients 2

A

—> Pas préparative pour les Lipoprot

—> Pas d’analyse des CM ni des VLDL

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14
Q

Electrophorèse sur agarose

Type de séparation ?

A

Séparation par charge le courant va du - vers le +

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15
Q

Electrophorèse sur agarose 2 avantages

A

—> Faible V

—> Plusieurs en même temps

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16
Q

Electrophorèse sur agarose 2 inconvénients

A

—> Recoupement de certaines LP

—> Pas une méthode préparative pour les LP

17
Q

Chromato d’exclusion

Phase stationnaire
Phase mobile
Principes de séparation

A

Phase stationnaire : mélange de billes dont les pores sont de tailles variables

Phase mobile : tampon quelconque

Principe :
Un petit constituant va mettre du temps à passer vs un gros qui va être arrêté très vite

Les grosses particules sortent les premieres

18
Q

Chromato d’exclusion 3 avantages

A

—> méthode préparative / quantitative

—> rapide mais que 1 échantillon

—> Séparation douce

19
Q

Chromato d’exclusion 4 inconvénients

A

—> Plus diluées à cause des tampons

—> Que sur des petits volumes

—> Pas de séparation de la Lp(a)

—> Risque de contamination des LP par des prot plasmatique

20
Q

Chromato d’affinité

Phase stationnaire
Phase mobile
Principes de séparation

A

Phase stationnaire : billes avec un Ac

Phase mobile : tampon de basse force ioniques

Principe :
ApoAI va se fixer sur son Ac anti ApoAI
Puis on fait passer un tampon de forte force ionique

21
Q

Spectrophotométrie

A

Chromogène coloré quand il est oxydé et mesure de l’absorbance

Réaction de Trinder