november 2015 Flashcards
(30 cards)
Ovenfor er vist et lysmikroskopisk billede af et væv.
1.
a. Angiv navn for A-D.
b. Redegør for dannelse af struktur A.
1.
a) A: Haversk system/Cortikalt osteon, B: Haversk kanal, C: Canaliculi, D: Lakune/osteocyt.
b) Det Haverske system er opstået ved aktivitet af osteoklaster, der har udhulet en tunnel med en diameter på typisk omkring 150 μm igennem allerede eksisterende knoglevæv. Efterfølgende har osteoblaster sat sig på tunnelens sider og har ved successive bølger af aktivitet deponeret osteoid, der efterfølgende mineraliseres. Dette giver ophav til en indadrettet knoglevækst med lagvis indfangning af osteoblaster i lakuner (som i D). Osteoblast aktivitet ophører og efterlader en Haversk kanal (som i B), der indeholder løst bindevæv, nerver og karforsyning.
Nysyntetiserede opløselige proteiner, som translokeres til ER lumen, vil efter 2 timer have opnået deres endelige destination. Ved hjælp af proteinsyntese inhibitorer og proteiner som er mærket (”tagged”) med green fluorescent protein (GFP) er det muligt at følge, hvorledes specifikke proteiner transporteres/lokaliseres i den sekretoriske pathway i celler i kultur.
I spørgsmål 1-3 antages det, at proteinerne påvises 120 minutter efter at proteinsyntesen er inhiberet.
Angiv hvor i den sekretoriske pathway nysyntetiserede opløselige proteiner med mannose-6-fosfat er lokaliseret.
De opløselige proteiner ville være lokaliseret i lumen af lysosomer.
Nysyntetiserede opløselige proteiner, som translokeres til ER lumen, vil efter 2 timer have opnået deres endelige destination. Ved hjælp af proteinsyntese inhibitorer og proteiner som er mærket (”tagged”) med green fluorescent protein (GFP) er det muligt at følge, hvorledes specifikke proteiner transporteres/lokaliseres i den sekretoriske pathway i celler i kultur.
I spørgsmål 1-3 antages det, at proteinerne påvises 120 minutter efter at proteinsyntesen er inhiberet.
Angiv hvor i den sekretoriske pathway nysyntetiserede opløselige proteiner, som indeholder et ER retention signal (KDEL-signal i proteinets C-terminale ende), er lokaliseret.
De opløselige proteiner ville være lokaliseret i lumen af ER (evt. en lille mængde i cis siden af Golgi apparatet).
Nysyntetiserede opløselige proteiner, som translokeres til ER lumen, vil efter 2 timer have opnået deres endelige destination. Ved hjælp af proteinsyntese inhibitorer og proteiner som er mærket (”tagged”) med green fluorescent protein (GFP) er det muligt at følge, hvorledes specifikke proteiner transporteres/lokaliseres i den sekretoriske pathway i celler i kultur.
I spørgsmål 1-3 antages det, at proteinerne påvises 120 minutter efter at proteinsyntesen er inhiberet.
Forklar hvorvidt det er muligt at lokalisere nysyntetiserede, opløselige proteiner, indeholdende en mutation der ødelægger ER retention signalet, i cellerne.
Hvis retention signalet er ødelagt, vil de opløselige proteiner efter 120 minutter være secerneret via den konstitutive exocytotiske pathway, og således vil de opløselige proteiner ikke kunne lokaliseres i cellen. Alternativt kan der svares, at de opløselige proteiner på grund af mutationen bliver nedbrudt, hvorfor de ikke kan lokaliseres i cellen.
Proteiner, som translokeres til ER lumen, kan modificeres co- og posttranslationelt.
4. Beskriv funktionen af to proteinmodifikationer der typisk foregår i lumen af ER.
Proteiner kan N-glykosyleres i ER. Glykosylering kan beskytte proteiner mod nedbrydning, tilbageholde proteiner i ER indtil de er korrekt foldede, indgå i dannelsen af den beskyttende glycocalyx og fungere i cellegenkendelse.
Proteiner kan danne disulfid-bindinger i ER. Disulfid-bindinger hjælper med at stabilisere proteiners struktur (især når proteiner udsættes for f.eks. nedbrydende enzymer eller ændringer i pH uden for cellen).
Hvis proteiner ikke foldes korrekt i ER, vil de blive nedbrudt.
5. Beskriv hvorledes sådanne proteiner bliver nedbrudt i cellen
Proteiner som er misfoldede vil blive eksporteret til cytosolen via translokatøren. I cytosolen bliver disse proteiner påsat en kort kæde af ubiquitin som senere genkendes af proteasomet, der står for nedbrydningen af ubiquitinylerede proteiner.
Proteiner transporteres via vesikeltransport fra et kompartment til et andet i den sekretoriske pathway.
6. Beskriv hvorledes en vesikel kan optage et specifikt opløseligt protein (”cargo”), som skal transporteres til et andet kompartment.
Adaptiner bruges til at selektere specifikke proteiner, som skal transporteres fra et kompartment til et andet. Opløselige proteiner som f.eks. lysosomale enzymer bærer specifikke signaler (mannose-6-fosfat) som genkendes af cargo receptorer i TGN (mannose-6-fosfat receptorer). Adaptiner binder herefter til cargo receptorerne, som har bundet det specifikke protein, der skal transporteres til et andet kompartment. Da adaptin samtidigt kan binde til coat proteiner, som danner vesiklen, vil det specifikke protein derved blive placeret i lumen af den nydannede vesikel
- Beskriv hvorledes en vesikel kan genkende og fusionere med det korrekte kompartment.
Vesiklen bærer specifikke Rab proteiner i membranen, som genkendes af korresponderende tethering proteiner på target kompartment membranen. Denne binding mellem specifikke Rab proteiner på vesiklens overflade og tethering proteiner på target kompartment membranens overflade sikrer, at transportvesiklen kommer til det korrekte target kompartment. Yderligere genkendelse mellem transportvesiklen og det korrekte target kompartment sker via kontakt mellem specifikke v-SNAREs på vesikelmembranen og specifikke t-SNAREs på target kompartment membranen. Selve fusionen mellem vesiklen og target kompartment katalyseres også af v-SNAREs på vesiklen og t-SNAREs på target membranen, som vikler sig om hinanden og som et spil trækker vesikelmembranen og target kompartment membranen tættere og tættere på hinanden. Når de to membraner er 1.5 nm fra hinanden, vil deres lipider fusionere og vesikelmembranen er dermed fusioneret med og integreret i target kompartment membranen, og vesiklens luminale cargo vil blive afleveret til lumen af target kompartmentet
Genekspression
Ekspressionen af Interleukin 2 genet reguleres (i eukaryote celler) af DNA sekvenselementet ARRE2, som genkendes af tre forskellige transskriptionsfaktorer, cFos, cJun og NFAT. Under studiet af reguleringen af Interleukin 2 genet udførtes et genekspressions- og et EMSA (”electrophoretic mobility shift assay”) eksperiment som vist i figur 1 og 2.
Figur 1 viser et cellekulturforsøg, hvor de anvendte celler udtrykker forskellige kombinationer af cFos, cJun og NFAT (1-4). Cellerne er yderligere transfekteret med en vektor indeholdende rapportørgenet β-Gal (som koder for enzymet β-galactosidase) og et sekvenselement, ARRE2, opstrøms for transskriptionsstart (angivet med pil). Efterfølgende er ekspressionen af β-galactosidase protein målt, som et udtryk for transskriptionsaktivitet. (Efter Petersen et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996).
a. Redegør for resultatet af forsøget i figur 1 i relation til transskriptionsreguleringen af Interleukin 2 genet.
b. Angiv hvilket enzym som syntetiserer Interleukin 2 mRNA.
c. Redegør for hvorfor β-gal ofte anvendes i denne type forsøg i stedet for det oprindelige gen (her Interleukin 2).
1.
a. Ud fra figur 1 kan det observeres, at initiering af transskriptionen af β-gal genet kun kan foregå i nærvær af alle tre proteiner: NFAT, cFos og cJun, Det kan derfor konkluderes, at NFAT, cFos og cJun er genregulatoriske proteiner nødvendige for initiering af transskription af Interleukin 2 genet.
b. RNA polymerase II (idet der transskriberes mRNA).
c. β-galactosidase anvendes meget ofte som rapportørgen, idet enzymaktivitet let og kvantitativt kan måles (kolorimetrisk) i modsætningen til det oprindelige genprodukt.
Figur 2 viser et EMSA eksperiment med DNA indeholdende ARRE2 sekvenselementet og proteinerne AP-1 (som er en heterodimer af cJun og cFos) og NFAT i forskellige koncentrationer. (Efter Petersen et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1996).
2.
a. Redegør kort for EMSA metoden.
b. Forklar resultatet af forsøget i figur 2.
2.
a. I et EMSA forsøg analyseres ændringer i migrationen af et DNA fragment (som kan detekteres vha. radioaktiv (32P) - eller fluorescens-mærkning) ved gel-elektroforese, som adskiller DNA efter størrelse. Migrationen af et DNA fragment reduceres, såfremt dette binder protein(er).
b. I dette forsøg vises at både AP-1 og NFAT transskriptionsfaktorerne binder til ARRE2. Bånd 1 er frit DNA indeholdende ARRE2; bånd 2 er NFAT bundet til DNA indeholdende ARRE2 og bånd 3 er NFAT og AP-1 bundet til DNA indeholdende ARRE2 (eller evt. kun AP-1, idet det ikke ud fra dette forsøg kan konkluderes om NFAT og AP-1 binder samtidigt til hver sit bindingssted, eller binder til samme bindingssted. Se dog opgave 1 som viser, at både NFAT og cfos og cjun (AP-1) er nødvendige for aktivitet, og opgave 4, som viser at NFAT og AP-1 binder samtidigt).
Hvis man undersøger forskellige ARRE2 sekvenselementer, finder man, at den del af ARRE2 sekvenselementet, som genkendes af AP-1 transskriptionsfaktoren, varierer.
3.
a. Angiv 7 base konsensussekvensen for AP-1 binding ud fra følgende tre ARRE2 sekvenselementer:
5’-CCCAGTGAATGACTCACCTTGGCACA-3’
5’-AGCTGTGTCTGACTCATGCT-3’
5’-AAGCAATTATGAGTCAGTTTGCGG-3’
a. Ved alignment af de 3 sekvenser:
5’-CCCAGTGAATGACTCACCTTGGCACA-3’
5’-AGCTGTGTCTGACTCATGCT-3’
5’-AAGCAATTATGAGTCAGTTTGCGG-3’
fås 7 base konsensussekvensen: TGANTCA. Det vil ligeledes blive betragtet som fyldestgørende svar at angive TGACTCA.
b. Man kunne foretage et EMSA eksperiment (alternativt et ”footprint”), hvor man selektivt ændrede en eller flere baser i konsensussekvensen og observerede at bindingen aftog.
Figur 3 viser strukturen (bestemt ved røntgen-krystallografi) af protein-DNA komplekset mellem NFAT (gul/grøn), AP-1 (rød/lilla) og sekvenselementet ARRE2.
- Beskriv ud fra figur 3 de strukturelle forskelle mellem de to proteiner NFAT og AP-1,
herunder hvorledes AP-1 binder til og genkender ARRE2 DNA elementet.
NFAT er primært opbygget af β-strands/sheets og loops, hvorimod AP-1 er en heterodimer bestående af to strukturelt identiske subunits (cFos og cJun), som hver for sig er en sammenhængende α-helix. cFos og cJun binder til hinanden (via en ”leucin-zipper”), og begge binder til DNA helixen via en α-helix, som genkender DNA sekvensen (i major groove via hydrogenbindinger mm.). ECB, 4. udgave, kapitel 4 og 8.
Transskription af cFos igangsættes som et ”early gene respons” efter aktivering af MAPKinasen ERK1/2.
- Redegør, gerne ved hjælp af en skitse, for hvorledes aktivering af en receptor tyrosin kinase kan lede til øget transskription af cFos.
- Efter autofosforylering af receptor tyrosin kinasen kan et adaptorprotein bindes. Adaptorproteinet binder derefter en Ras-GEF, som faciliterer dissociation af GDP fra Ras, hvorefter Ras binder GTP. Det GTP-bundne RAS vil aktivere MAPKKK, som fosforylerer MAPKK, der fosforylerer MAPK. MAPK translokeres til cellekernen og fosforylerer transskriptionsfaktorer nødvendige for transskription af early response gener såsom cFos.
a) Angiv de vigtigste mRNA processeringstrin og deres funktion.
b) Angiv hvor i cellen og hvornår (relativt til mRNA syntesen) processeringen finder sted.
a) Capping er afgørende for translationsinitiering, kerneeksport og beskyttelse mod nedbrydning. Splejsning fjerner introns (og giver mulighed for splicevarianter) og polyadenylering er afgørende for kerneeksport, mRNA levetidskontrol og er translationsinitieringssignal.
b) Capping: co-transskriptionelt i kernen.
Splejsning: co-transskriptionelt i kernen (evt. posttransskriptionelt).
Polyadenylering: posttransskriptionelt i kernen (co-transskriptionelt betragtes ligeledes som korrekt svar, idet processeringen er afhængig af RNA polymerase II).