VL 6 Insulin 2 Flashcards

1
Q

Rekombinante Methode

A

bei E.coli
A und B kette werden getrennt voneinander produziert. (als Fusionsproteine mit ß-Galactosidase )
Alle Cysteine und Methionine wurden entfernt.

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2
Q

Bromcyanspaltun

A

spaltet ß-Galactosidase und Ketten an einem Methionin
70 % Ameisensäure (flüchtig
Proteine kann man im Äther ausfällen.

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3
Q

Oxidative Sulfitolyse

A

Protein ist stark neg, kann in Lösung gehalten werden und durch Ionenaustaschchromatographie hufgereinigt werden.

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4
Q

Richtige Faltung

A

Faltung ist eine IntramolekulareWW

Triebkraft Hydrophobe WW

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5
Q

Gluthation

A

ein Tripeptid welches Hilft richtige Disulfidbrückenbildung fördert.

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6
Q

Arginin in der Lösung

A

hilft bei der Proteinfaltung 0,5 M

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7
Q

Hefe als Expressionsorgansimus

A

▪Heterologe Expression funktioneller humaner Proteine möglich ▪Proteinfaltung in korrekte Konformation
▪Ähnliche Exportproteine
▪Gut etabliertes System
▪Einfache genetische Manipulation ▪Preisgünstige, einfache Kultivierung ▪Kurzer Lebenszyklus (90 min)
▪31% der Proteine sind ortholog zu menschlichen ▪Vergleichbare Permeabilität der Membran

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8
Q

Expression von Mini Pro-Insulin in S. cerevisiae

A

C-Peptid ist stark verkürzt im Vergleich zum Humanen (weil in der C-Kette natürliche Schnittstellen sind )

B-Kette hat man das letzte As verändert um C-Peptid raus zuspalten

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9
Q

Insulinvarianten - Lispro-Insulin

A

Hat B28 und B29 (Lys und Pro ) getauscht.

Sehr schnell wirkendes Insulin, es wird nicht mehr Dimerisiert –> aktives Monomer.

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10
Q

Insulinvarianten - Insulin-Aspartat

A

B28 Pro ist durch Asp ausgetauscht.

auch keine Dimerisierung noch potenter als Lidpro-Insulin

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11
Q

Insulinvarianten - Insulin Glargin

A

B31 und B32 Arg Arg eingesetzt, bildet stabiles Hexamer, wirkt sehr lange

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12
Q

Regulation der Insulinfreisetzung

A

GLP-1 regt die Freisetzung von Insulin in den ß-Zellen an.

GLP wirkt als Aktivator und Hemmer

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13
Q

Gliptine

A
Die Gliptine haben eine Prolinähnliche Struktur, da DPP-4 vorzugsweise Dipeptide abspaltet, die an zweiter Position des N-Terminus
ein Prolin (oder Alanin) enthalten.
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14
Q

Hefe /Ecoli Schaukelvektor

A

Plasmind enthält 2 Replikationsursprung und Promotoren
für beide Organismen (Hefe und Ecoli)
- wird in Ecoli vermehrt
- kann in Hefe expremiert werden.

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15
Q

Transformation von S. cerevisiae

A

Aufschluss der Zellwand:

  • Behandlung mit Zymolase (auch: Lyticase)
  • Alternativ: hypotonischer Schock
  • Transformation mit CaCl2 und PEG;
  • Alternativ: Lithiumacetat + PEG + DMSO + Lachssperma-DNA(!)
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16
Q

Selektion über Auxotrophie auf Mangelmedium, z.B.

A
  • minus Leu (für LEU2),
  • minus His (für HIS3)
  • minus Uracil (für URA3 )
17
Q

Chromosomale Integration in S. cerevisiae

A

integriert Gen für das Protein in das chromosomale Genom.

Überkreuz-Anlagerung homologer Sequenzen

18
Q

Nachteile der Expression in S. cerevisiae

A

▪kein starker, induzierbarer Promotor
▪ ethanolische Gärung bei hohen Zelldichten (problematisch bei
Promotoren, die durch Glucosemangel induziert werden)
▪ relativ niedrige Produktausbeuten (1-5 % d. Gesamtproteins)
▪Heterologe Proteinexpression in Wachstumsphase behindert Wachstum
▪z.T. Hyperglykosylierung von rekombinanten Proteinen
▪ ⇒ verminderte Aktivität, ggf. Immunogenität (1,3-mannosidische Bindung) ▪häufig geringe Sekretion von Zielproteinen in Kulturüberstand

19
Q

Alternative: Pichia pastoris

A

▪ methylotroph (kann von MeOH als einziger C-Quelle leben!)
▪ sehr starker, gut induzierbarer Promotor verfügbar
▪ hohe Produktionsraten intrazellulär lokalisierter Proteine
▪ seltenere Hyperglykosylierung
▪ keine 1,3-Verknüpfung von Mannose
▪ effektive Sekretion vieler Proteine
⇒ N-terminales α-Faktor Sekretionssignal
▪ extrem hohe Zelldichten im Fermenter erreichbar
▪ stark reduzierte alkoholische Gärung
(bei hohen Zellzahlen keine tox. c(EtOH))