autres bactéries à gram négatif 1 Flashcards

(34 cards)

1
Q

genre pseudomonas : gram, aérobie ? température ?

A

négatif
aérobie stricte
mésophile

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Q

(B) Citer les habitats possibles du genre Pseudomonas

A

dans le sol, les végétaux, et l‘eau = bactéries telluriques

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3
Q

pathogénicité pseudomonas ?

A

Pathogène opportuniste : bactérie zoonotique
= diarrhées, infections urinaires, infections nosocomiales, infection alimentaire

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4
Q

resistance pseudomonas

A

ESKAPEE

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5
Q

comparaison tableau pseudomonas

A

:)

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6
Q

(B) Citer les deux pigments produits par P. aeruginosa jouant un rôle dans le pouvoir pathogène

A

• Synthèse de pyoverdine
Sidérophore, pigment jaune-vert : P. aeruginosa, P. fluorescens, P. putida
pyocyanine pyoverdine pyorubine pyomélanine

• Synthèse de pyocyanine
Pigment bleu à activité bactériostatique contre les Grams positifs : P. aeruginosa

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7
Q

clinique pseudomonas

A

Infections nosocomiales
➢ Infections urinaires
➢ Surinfection de plaie
➢ Ulcère cornéen
➢ Pneumonie
Otites chroniques chez les chiens
Mammites chez la vache laitière

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8
Q

espèces atteintes pseudomonas

A

carnivores, ruminants, cheval, porc, vison, chinchilla, oiseaux, reptiles

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9
Q

pseudomonas Présence d’un … facilitant … est essentiel !

A

terrain
l’infection

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10
Q

pseudomonas résistance ?

A

Nombreuses acquises et naturelles

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11
Q

(B) Citer l’espèce pathogène chez le furet et les signes cliniques de l’infection

A

Pseudomonas luteola
→ Pleuropneumonie pyogranulomateuse chez le furet et infections cutanés

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12
Q

diagnostic pseudomonas

A

• Culture bactériologique
Milieu ordinaire à 37°C : croissance aisée entre 10 et 42°C
Diffusion de pigments
• Antibiogramme Indispensable

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13
Q

(A) Décrire en quoi P. aeruginosa peut être un dangereux pathogène
(B) Décrire quel moyen possède Pseudomonas qui peut compliquer le traitement (= en gras)
(B) Décrire la sensibilité aux antibiotiques des Pseudomonas

A

• Nombreuses résistances naturelles : Ampicilline, amoxicilline + acide clavulanique, pipéracilline, cefazoline, chloramphénicol, trimethoprime + sulphonamide et tétracycline
• Nombreuses résistances acquises : Acquisition de mutations et/ou de gènes de résistance
• Formation de biofilms
• Résistance à certains désinfectants : Ammoniums quaternaires
• Moindre sensibilité aux antibiotiques : ESKAPE(E)

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14
Q

synthèse de biofilm régulée par le ?

A

quorum sensing

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15
Q

Genre Moraxellaceae nombre ?

A

13 genres

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16
Q

moraxella, forme, gram, capsule ? groupés en …

A

gros bacille, gram -, capsulé
diplococcobacilles

17
Q

culture bactérie moraxella

A

37°C sur gélose enrichie (gélose au sang) Colonies hémolytiques, d’environ 1mm de diamètre en 48h (croissance lente !)

18
Q

(A) Indiquer l’habitat de l’espèce M. bovis et le mode de transmission

A

Commensales des muqueuses : Homme et autres mammifères
M. bovis : conjonctive ou nasopharynx des bovins asymptomatiques (> 2 ans)
Transmission : contact direct ou insectes volants (mouches → transport)
Sensibles à la dessiccation → ne survivent pas bien loin de leur hôte

19
Q

pouvoir pathogène moraxella bovis

A

facteurs de virulence
Pili de type 4 : adhésion et colonisation de l’épithélium cornéen
Hémolysine : cytotoxine corrélée à la virulence

20
Q

(A) Décrire la maladie induite par M. bovis : nom et animaux touchés

A

Kérato-conjonctivite infectieuse bovine (KCBI)
- Facteurs environnementaux prédisposants → irritation des yeux : UV (soleil !), poussières, végétation/paille, mouches, …

Jeunes animaux (<2 ans)

• Surinfections : bactériennes, virales ou parasitaires, signes cliniques évolutifs :
- Cicatrisation et formation d’un cône rouge typique
- Œdème cornéen —> ulcération : larmoiement, blépharospasme, conjonctivite, ulcère cornéen, surinfection

21
Q

clinique moraxella bovis

A

Œdème cornéen → ulcération
➢ Larmoiement, blépharospasme, conjonctivite
➢ Ulcère cornéen
➢ Surinfection

22
Q

diagnostic moraxella bovis

A

culture bactérienne
Cicatrisation : tissu de granulation formant un cône rouge typique !
Écouvillon : récupérer des sécrétions lacrymales
Culture : Préciser au laboratoire que vous recherchez M. bovis

23
Q

antibiothérapie moraxella bovis

A

Généralement sensible à tous les antibiotiques utilisés en pratique
Traitement topique : si possible dès les premiers signes cliniques

24
Q

prévention moraxella bovis

A

Lutte contre les facteurs prédisposants : mouches et poussières
Vaccin : sur base des fimbriae (idem fimbriae des entérobactéries)

25
acinetobacter : forme gram spore capsule respiration forme quoi ?
coco ides gram négatif non non aérobie stricte biofilms
26
acinetobacter caractéristiques
• Bactéries ubiquistes : environnementale (eau, sol, végétaux), flore commensale cutanée chez l’Homme • Pathogène opportuniste en médecine vétérinaire et humaine : bactérie zoonotique Infections nosocomiales, infections urinaires, septicémies, infections de plaies, ... • Vecteur de résistances aux antibiotiques Appartient au groupe ESKAPE(E)
27
acinetobacter baumanii : résistances
• Nombreuses résistances naturelles Ampicilline, amoxicilline + acide clavulanique, cefazoline et trimethoprime • Nombreuses résistances acquises Acquisition de mutations et/ou de gènes de résistance • Formation de biofilms
28
(A) Décrire la morphologie microscopique du genre Pseudomonas
**Bacille** à **GRAM négatif**, mobile polaire ou immobile aérobie stricte, mésophile, oxydase +, croissance sur milieu ordinaire
29
(A) Expliquer que les Pseudomonas pathogènes sont (pathogénicité ?) et sont responsables (types d’infections ?) (A) Indiquer 3 localisations différentes d’infection par P. aeruginosa chez le chien
**Pathogènes opportunistes** : Présence d’un **terrain facilitant l’infection** essentiel : immunodepression, plaie, traitement antibiotique, contamination iatrogène… **Infections nosocomiales** : -urinaires : vessie -surinfection de plaie -ulcère cornéen : cornée -pneumonie : poumons **Otites chroniques** chez les chiens **Mammites** chez la vache laitière
30
(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Moraxella
**Gros bacille** à **GRAM négatif**, immobile et **capsulé**, groupés en diplococcobacilles Culture bactériologique enrichie sur gélose au sang , croissance lente (48h)
31
(B) Citer les points d’attention lors de l’envoi d’un prélèvement au laboratoire pour une identification de M. bovis
• Écouvillon : récupérer des sécrétions lacrymales • Culture : Préciser au laboratoire que vous recherchez M. bovis (gélose enrichie au sang à 37°C, croissance lente)
32
(B) Citer l’habitat des Acinetobacter
bactéries **coccoides** à **GRAM négatif**, immobiles, non sporulées, aérobie stricte Bactéries **ubiquistes** : environnement (eau, sol, végétaux), flore commensale cutanée chez l’Homme Bactérie **opportuniste**
33
(B) Citer les 3 facteurs impliqués dans l’exceptionnelle résistance aux antibiotiques d’A. baumanii et des Pseudomonas
• Acquisition et transmission de nombreuses résistances (ESKAPE(E)) • Présence de résistances naturelles • Biofilms
34
(A) Décrire en quoi Acinetobacter baumanii peut être un dangereux pathogène
• Résistance aux antibiotiques : ESKAPEE • Nombreuses résistances naturelles : Ampicilline, amoxicilline + acide clavulanique, cefazoline, trimethoprime • Nombreuses résistances acquises : acquisition de mutations et / ou de gènes de résistance • Formation de biofilms