Autres bactéries GRAM - 2

Question 1

(A) Indiquer les principales espèces animales atteintes par Francisella tularensis et les réservoirs

Answer 1

Bactérie ubiquitaire
Réservoirs : rongeurs, lagomorphes et tiques
Espèces touchées : lièvres, lapins, rongeurs
Hôtes accidentels : carnivores, ruminants, porcs, chevaux

Question 2

(A) Citer les particularités de résistance du genre Francisella

Answer 2

• Très sensible à la chaleur et à la putréfaction : 3-4 jours dans les cadavres l’hiver
• Plusieurs mois dans l’environnement : eau et sol

Question 3

(A) Citer les formes cliniques décrites chez les espèces animales sensibles, notamment le lièvre

Answer 3

• lièvres, lapins, rongeurs : tularémie
- évolution aiguë ou subaiguë : « pseudo-peste»
- septicémie, mort en 1 semaine
- lésions hépatiques et spléniques (rate en cigare)
- mortalité importante dans les populations de lièvres
- peu de symptômes visibles hormis parfois animaux apathiques

Question 4

(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Francisella

Answer 4

Tout petit bacille à GRAM négatif, immobile, asporulé, souvent encapsulé
aérobie stricte, culture fastidieuse sur milieu enrichi, croissance lente en 2 à 6 jours

Question 5

(B) Citer les deux principales sous-espèces de F. tularensis responsables de la tularémie et leur répartition géographique

Answer 5

Francisella tularensis tularensis : virulence élevée, Amérique du Nord
Francisella tularensis holartica : virulence moyenne, Europe, Asie

Question 6

(B) Indiquer les principaux modes de transmission de la tularémie

Answer 6

• Percutanée (petite taille : peut traverser la peau saine, favorisé si lésions)
• Muqueuses
• Respiratoire : aérosols autopsie, poussières de fourrage
• Conjonctivale : éclaboussures projetées dans les yeux
• Ingestion : eau contaminée ou viande peu cuite animal infecté
• Inoculation : griffure, morsure, arthropodes hématophages (tiques)

Question 7

(B) Décrire les méthodes générales de diagnostic

Answer 7

• Prélèvements : 4°C dans sang, rate, foie, poumons
• PCR (phase aiguë)
• Culture fastidieuse sur milieu enrichi : croissance lente en 2 à 6 jours
• Voie percutanée (souris, cobaye), pour prélèvements polycontaminés (gibier)
• Sérologie (MAT) : à partir de 10-15j Post Infection
• Agent pathogène de classe 3 !! Culture possible uniquement en BSL3

Question 8

(A) Décrire la morphologie microscopique de la famille des Pasteurellaceae

Answer 8

Bacilles GRAM négatifs de petite taille, immobiles, non sporulé, certaines espèces sont capsulées
Croissance sur milieu enrichi (sang) à 37°C, aéro-anaérobie facultatif

Question 9

(A) Citer la principale espèce de Pasteurella importante en pathologie

Answer 9

Pasteurella multocida

Question 10

(A) Citer les habitats possibles du genre Pasteurella

Answer 10

Muqueuses nasales et buccales des mammifères et oiseaux
porteurs sains : chiens, chats, lapins, porcs
Ne survit pas dans l’environnement

Question 11

(A) Décrire les trois formes d’infections à Pasteurella chez les animaux
(B) Citer les espèces animales atteintes par Pasteurella multocida et le nom des pathologies associées

Answer 11

1) Septicémie à évolution foudroyante (forme suraiguë) :
• Septicémie hémorragique des bœufs et des buffles
• choléra aviaire : volailles et oiseaux sauvages, dindes +++

2) Rhinites, pneumonies et broncho-pneumonies :
• Broncho-Pneumonie Infectieuse Enzootique des ruminants (BPIE)
• Rhinite atrophique du porc
• Pneumonie infectieuse des carnivores
• coryza du lapin

3) Affections pyogènes :
• Mammites, abcès, arthrites, encéphalites
• Infections génitales chez males et femelles pour Histophilus somni

Question 12

(A) Citer les deux agents bactériens impliqués dans la rhinite atrophique du porc

Answer 12

Pasteurella multocida et Bordetella bronchoseptica

Question 13

(A) Expliquer quelle est la principale condition de transmission de P. multocida à l’Homme

Answer 13

Pasteurellose d’inoculation : griffures, morsures par carnivores ou lapins

Question 14

(A) Citer les 3 pasteurelles impliquées dans les surinfections de BPIE

Answer 14

Pasteurella multocida
Mannheimia haemolytica
Histophilus somni

Question 15

(A) Décrire le pouvoir pathogène de Mannheimia haemolytica chez les bovins

Answer 15

Possède une leucotoxine associée à la gravité des infections (souvent cas mortels)

Question 16

(B) Indiquer le support structural des deux antigènes majeurs de Pasteurella multocida et le nom des sérotypes les plus virulents

Answer 16

Antigène capsulaire :
- Polyosides simples et protéines
- 5 sérotypes : A,B,D,E,F
- Grande quantité d’acide hyaluronique pour la capsule des A et D

Antigène somatique
- 12 sérotypes O chez P. multocida

Question 17

(B) Décrire les facteurs de pouvoir pathogène du genre Pasteurella

Answer 17

1) Capsule : polysaccharidique
- Résistance à la phagocytose et à l’action du complément
- Acide hyaluronique de A et D permet l’adhésion aux cellules épithéliales respiratoires

2) LPS
- LPS complet nécessaire pour le pouvoir pathogène
- Induit réponse inflammatoire

3) Adhésines
- Pili de type 4, adhésion aux épithéliums muqueux

4) Toxines dermonécrotiques : présentes chez certaines souches de A et D
- Mitogène pour ostéoclastes —> Rhinite atrophique par destruction de tissu osseux, n’existe pas chez les souches responsables de choléra, septicémie hémorragique ou pneumonie

Question 18

(B) Indiquer les méthodes générales de diagnostic du genre Pasteurella

Answer 18

1) Bactériologie : culture sur milieu enrichi, identification bactérienne et antibiogramme
2) Biologie moléculaire : PCR multiplex pour les BPIE

Question 19

(B) Indiquer les particularités des vaccins contre Pasteurella multocida

Answer 19

Vaccins tués, spécifiques de sérotype
Mauvais antigènes —> suspension dense de germes et adjuvants nécessaires
Rappels fréquents car immunité conférée médiocre

• Porc : en association avec B. bronchiseptica contre rhinite atrophique
• Veaux : vaccin multivalent (M. haemolytica +/- virus +/- P. multocida +/- H.somni)
• Volailles : choléra des poules

Question 20

(B) Citer l’agent responsable de pleuropneumonie chez le porc et les signes cliniques de la maladie

Answer 20

Actinobacillus pleuropneumoniae
• porcs de 2 à 6 mois
• Mortalité importante, forme parfois suraiguë
• Baisse de croissance des animaux, augmentation âge à l’abattage

Question 21

(B) Citer le nom de la maladie et les signes cliniques associés à l’infection par Actinobacillus ligneresii chez les bovins

Answer 21

actinobacillose = langue de bois
- lésions suppuratives chroniques
- pus granuleux caractéristique
- fibrose linguale —> diminution préhension des aliments
- abcès à différentes localisations

Question 22

(B) Citer l’agent responsable du coryza infectieux des volailles et les signes cliniques de la maladie

Answer 22

Avibacterium paragallinarum
- Inflammation aiguë de l’appareil respiratoire haut : jetage nasal, râles, détresse respiratoire, conjonctivite, abattement
- pertes économiques importantes

Question 23

(A) Décrire la morphologie microscopique du genre Bordetella

Answer 23

Petit coccobacille à GRAM négatif
aérobie stricte
immobile (Bp, Bpp) à mobile par ciliature péritriche dégénérée (Bb, Ba)
non sporulé
Culture sur gélose enrichie sang pour Bb et Ba —> 24 à 48h
milieu de Bordet et Gengou pour Bp et Bpp

Question 24

(A) Citer les habitats possibles du genre Bordetella

Answer 24

Commensale des muqueuses respiratoires des mammifères et oiseaux
survie significative dans l’environnement
Transmission par aérosols ou indirecte via l’eau pour Ba

Question 25

(A) Citer l’espèce du genre Bordetella la plus importante en pathologie vétérinaire

Answer 25

Bordetella bronchiseptica —> maladies respiratoires

Question 26

(A) Citer les formes d’infections à Bordetella bronchiseptica chez le Chien, le Porc, le Lapin et le Cobaye

Answer 26

**Chien** : **trachéobronchite infectieuse canine** = syndrome toux du chenil **Porc** : Rhinite atrophique **Cobaye** : Portage asymptomatique puis réactivation suite à changement environnement, conséquences désastreuses en élevage, rhinite, trachéite, conjonctivite, évolue en pneumonie et trouble de la reproduction **Lapin** : porteur avec rhinite bénigne le plus souvent

Question 27

(A) Indiquer les méthodes générales de diagnostic du genre Bordetella

Answer 27

1) Prélèvements : écouvillonnage nasal, lavage trachéal ou broncho-alvéolaire, biopsie du poumon 2) Diagnostic bactériologique : Culture sur gélose au sang (36 à 48h), identification par critères biochimiques 3) Toux du chenil : PCR pour détecter virus et bactéries, mais pas d’antibiogramme

Question 28

(A) Citer les espèces animales vaccinées contre Bordetella bronchiseptica

Answer 28

Chiens (+ virus parainfluenza) contre la toux du chenil : voie intranasale vivant atténué, ou sous-cutanée : inactivé Porcs (rhinite atrophique) Homme (coqueluche) PAS DE VACCIN COBAYE

Question 29

(A) Indiquer les facteurs de pouvoir pathogène du genre Bordetella et décrire leur implication dans la pathogénie d’une bordetellose

Answer 29

• Transmission par aérosol • Adhérence aux cils de l’épithélium cilié respiratoire : **Adhésines : hémagglutinine filamenteuse, toxines de pertussis domaine B** • Multiplication bactérienne • Induction d’une ciliostase, production et accumulation de mucus : **toxine cytotrachéale et destruction du mécanisme de clairance ciliaire des cellules trachéales** • Destruction des cellules ciliées par les toxines : **toxines dermonécrotiques** • Induction d’une réponse inflammatoire locale • Hyperlymphocytose : surinfections fréquentes (P. multocida +++) • Action locale : pas de bactériémie !!! - échappement à la phagocytose : toxine adénylcyclase-hémolysine - Action en synergie des toxines et des adhésines : expression fonction de l’evt, *quorum sensing* - gènes sous la dépendance du locus bvg

Question 30

(B) Citer les localisations d’infections à Bordetella chez la dinde et l’espèce impliquée

Answer 30

*Bordetella avium* bordetellose : écoulement oculaire, nasal, trachéite, rhinite, dyspnée, bronchopneumonie, détresse respiratoire, mortalité faible

Question 31

(A) Citer l’espèce animale atteinte par Taylorella equigenitalis

Answer 31

équidés

Question 32

(A) Décrire le pouvoir pathogène de T. equigenitalis et le nom de la maladie associée (B) Citer les habitats possibles du genre Taylorella

Answer 32

Habitat : tractus génital des chevaux **Métrite contagieuse équine** : - Transmission vénérienne - Métrite purulente, très contagieuse - Stérilité temporaire : importance économique - Étalons porteurs asymptomatiques - Maladie réglementée soumise à surveillance

Question 33

(B) Décrire la morphologie microscopique du genre Taylorella

Answer 33

**Bacille** à **GRAM négatif** Immobile non sporulé capsulé Aéro-anaérobie facultatif Croissance lente (48h-72h) sur milieu enrichi, atmosphère enrichie en CO2

Question 34

(B) Indiquer les particularités du prélèvement et du diagnostic de laboratoire de l’infection par Taylorella

Answer 34

• Vétérinaire sanitaire et laboratoire agrégé • écouvillonnage fosse clitoridienne ou urétrale • Mise en culture gélose chocolat —> 7 jours pour négatif • Immunofluorescence directe —> 2 jours si négatif • PCR possible