Différenciation I Flashcards

1
Q

différenciation

A

acquisition par une cellule de caractères morphologiques originaux aboutissant à une spécialisation fonctionnelle

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Q

mécanismes moléculaires de la différenciation

A
  • nécessité de la ralentir la prolifération via des signaux reçus par la cellule
  • signaux extérieurs émanant des cellules d’un même tissu ou d’un autre tissu
  • arrêt du cycle cellulaire: arrêt en G1

expression ou repression de gènes spé au lignage permet la différenciation cellulaire

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3
Q

≠ signaux pouvant induire la différentiation

A
  • modif dans l’expression ou la répression de gènes spé
  • induction par ∑ ligand-récepteur
  • contacts directs entre cellules d’un même type
  • intéractions entre cellules de ≠ feuillets primitifs: épithélium, mésenchyme
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4
Q

intéraction L-R

A

certaines intéractions médiées par FdC ou les hormones et leurs récepteurs:

  • R à tyrosine kinase
  • hm liposolubles et R nucléaires: acide rétinoïque, hm stéroïdes, thyroxine
  • R couplés aux prot G: acétylcholine, sérotonine

régulation génique par l’intermédiaire de ≠ voies de signalisation intracell

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5
Q

intéractions c-c dans un même tissu

A

intervention des cadhérines ou caténines

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6
Q

intéractions entre feuillets ≠ ou avec la MEC

A

médiées par ≠ types de molécules:

  • GAG se lient aux prot pour former protéoglycanes
  • prot fibreuses structurale → collagène et l’élastine ou prot d’adhérence → fibronectine ou laminine
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7
Q

méthodes de reprogrammation

A

fusion cellulaire
utilisation d’extraits cellulaires
reprogrammation w/ FdT (Oct4, Sox2, myc, klf4)

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8
Q

transdifférenciation

A
  • changement irréversible d’une cellule différenciée en un autre type de cellule différenciée
  • processus de dédifférenciation et de prolifération est un stade de transition nécessaire mais pas obligatoire dans tous les cas
  • peut ê obtenue par ajout d’additif de culture (dexamethasone) / modification génétique de la cell d’origine (FdT Pdx1)
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9
Q

transdifférenciation directe

A

capacité à reprogrammer une cellule somatique en une autre cellule somatique sans passer par une cellule pluripotente

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10
Q

sources de CSM

A
moelle osseuse (63%)
tissu adipeux (10%)
gelée de Wharton (cordon ombilical 17% )
placenta (2%)
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11
Q

CSM propriétes

A

auto renouvellement

différenciation: adipocyte, chondrocyte, ostéocyte (spé mésodermique)

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12
Q

l’expansion avant la différenciation

A
échantillon biologique + bio réacteurs
→ milieu de culture + additifs:
- cytokines (IL2,4)
- FdC (GM-CSF, EPO...)
- aa
- suppléments: insuline, transferrine, sérum de veau, lysat plaquettaire
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13
Q

ex d’additifs pour induire différenciation

A
  1. Adipogenique
    milieu de culture = dexamethasone, insuline
    coloration = oil red
  2. Osteogenique
    milieu de culture = dexamethasone, beta-glycérolphosphate, acide ascorbique, BMP, TGF beta
    coloration = Alizarine Red S
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14
Q

rôle dexamethasone (corticoïde)

ex différenciation osseuse

A

induit expression de FdT spé Runx2, ostérix

induit ∑ de prot spé: BMP

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15
Q

rôle acide ascorbique (Vit C) et beta-glycérolphosphate

ex différenciation osseuse

A

favorisent la ∑ de collagène de type I

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16
Q

rôle TGF beta et BMP

ex différenciation osseuse

A

activent voie Runx2: favorisent ∑ ostéocalcine: ostéopontine

17
Q

impact différenciation

A
  • modif morphologie
  • modif du phénotype: comprend l’ensemble des marqueurs mb ou intracell exprimés par la cellule
  • modif du profil d’expression génique: évolution des FdT
  • modif facteurs sécrétés
18
Q

modif profil d’expression génique adipocytes et ostéocytes

A

CSM → adipocytes FdT: PPAR gamma

CSM → ostéocytes FdT: RUNX2/ Osterix

19
Q

RUNX2

A

impliqué dans la maturation des ostéoblastes

contrôle de la maturation des ostéoblastes et maturation en ostéocytes

20
Q

Ostérix

A

rôle dans l’orientation vers la lignée ostéoblastique

21
Q

facteurs sécrétés par CSM

A

FGF, TGF-beta
IL10, IL6
prostaglandines
métalloprotéases

22
Q

facteurs sécrétés par ostéocytes

A
TGF beta
IL6, IL-11
PTH
1,25 Vit D
TNF
23
Q

facteurs sécrétés par adipocytes

A
IGF, FGF, EGF
cytokines
prostaglandines
retinol, leptine, oestrogènes
TNF
24
Q

pour induire différenciation in vitro → choix bon additifs de culture

A
  • fixation sur des R cellulaire
  • induction d’une voie de signalisation
  • ∑ d’un FdT
  • activation gènes et ∑ des prot caractéristiques de la cellule que l’on souhaite obtenir
25
pour induire différenciation in vitro → tenir compte de l'environnement natif de la cellule que l'on souhaite obtenir
culture en 2D ou 3D dureté du support contraintes mécaniques
26
dureté du support pour l'adipocyte
10-50 Pa
27
dureté du support pour le neurone
0,1-1 kPa
28
dureté du support pour le myocyte
8-17 kPa
29
dureté du support pour l'ostéocyte
25-40 kPa
30
matrice peu élastique
forces nécessaires pour rompre l'adhésion à la matrice sont élevée augmentation de myosine et actine formation de PF → différenciation osseuse
31
matrice élastique
forces nécessaires pour rompre l'adhésion à la matrice sont faibles internalisation de R nécessaire à la différenciation osseuse → différenciation en cellules nerveuses
32
le flux sur la différenciation
augmente activité et viabilité des ostéoblastes
33
la compression sur la différenciation
accroit le dépôt de matrice minéralisée
34
la pression hydrostatique sur la différenciation
accroit la différenciation chondrogénique des CSM
35
la tension sur la différentiation
accroit la prolifération et fabrication de fibres de collagènes par les fibroblastes du tendon