Analyse microbiologique des aliments Flashcards

1
Q

Objectifs d’une analyse microbiologique: _______________, ________________, __________________.

A
  • Prévenir les maladies dues aux germes transmissibles (véhiculés) par les aliments, spécialement les TIAC (toxi-infection alimentaire collective);
  • Identifier les germes et aliments responsables des TIAC;
  • Prévenir les altérations alimentaires, qui mènent à la dégradation des qualités organoleptiques et nutritionnelles des aliments et donc à des pertes socio économiques.
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2
Q

L’analyse microbiologique des aliments peut concerner : ______________, _____________, _____________, __________________.

A

→ Recherche qualitative du germe, c’est-à-dire, déterminer si le germe est absent ou présent dans une quantité définie de l’aliment analysé (sans quantifier);
→ Recherche et dénombrement du germe : en plus de sa recherche qualitative, on détermine le nombre de germes présents dans une quantité déterminée de l’aliment analysé;
→ Recherche ou dosage de la /les toxine(s)/métabolites d’un germe donné;
→ Recherche du matériel génétique des germes (ADN et ARN spécifique).

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3
Q

L’analyse microbiologique des aliments se fait selon les étapes suivantes : __________, _________, ________, ___________, ___________, _____________.

A
  1. Échantillonnage et prélèvement;
  2. Préparation des échantillons et revivification;
  3. Pré-Enrichissement;
  4. Dilutions;
  5. Méthodes générales d’ensemencement;
  6. Identification du germe.
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4
Q

Mesures à respecter lors d’Échantillonnage et prélèvement en microbiologie alimentaire: _____________, _____________, ____________, ____________, _____________.

A
  • Respecter les règles d’asepsie et les règles de représentativité (l’échantillon doit représenter l’ensemble du lot);
  • Pas de modification de la flore présente dans le produit, lors de l’échantillonnage, pendant le transport et la conservation au niveau du laboratoire;
  • Éviter toute contamination extérieure;
  • Le laboratoire doit disposer d’environ 500g de produit, soit 5 fois 100g;
  • Ces 100g peuvent être fournis par une ou plusieurs pièces (boite, sac, sachet).
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5
Q

Dans la restauration collective, la réglementation exige de conserver un plat identique à celui servi aux clients pendant________à analyser en cas de suspicion de TIA.

A

72 heures

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6
Q

Fiche de renseignement ou de demande d’analyses alimentaires: _____________, ____________, __________, __________, __________, ___________, ____________, ______________.

A

● Identification précise du produit (désignation, N° de lot);
● Conditionnement et contenance (masse ou volume);
● Quantités de l’échantillon;
● Conditions de stockage et de transport;
● Ses dates de fabrication, cuisson, emballage, tranchage, DLC (date limite de consommation);
● Partie qui a réalisé l’échantillonnage (le labo, le demandeur ou une tierce partie), avec identification du préleveur;
● Motif de la demande (analyse de routine, inspection ou suspicion d’une TIA);
● Contraintes constatées sur site : emballage percé, quantité insuffisante, conditions de stockage non respectées ou autre.

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7
Q

Avant analyse, au laboratoire, il faut: _______________, ______________, _____________.

A

● S’assurer des conditions de transport, et des quantités nécessaires;
● Enregistrement des prélèvements;
● Procéder rapidement à l’analyse, ou conserver les échantillons selon les recommandations (spécifique pour chaque produit).

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8
Q

Souvent, l’analyse est refaite __fois pour le même paramètre et pour le même lot.

A

05

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9
Q

Préparation des échantillons et revivification
Pour la prise d’essai, prendre la quantité nécessaire à partir de: _________________, ________________, _______________, ____________________.

A

● Parties superficielles et profondes : les produits en tranches, hachés et les plats cuisinés à l’avance ;
● Sur la partie profonde après cautérisation (brulée et enlevée) de la surface pour les viandes (pièces), les volailles (pièces), les produits carnés (pièces) et les poissons entiers ;
● Sur le produit homogénéisé ou sur les parties superficielles et profondes : produit liquide ou semi-liquide, notamment les produits laitiers;
● Différentes parties pour les produits en plusieurs phases (non miscibles) et respecter la proportionnalité.

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9
Q

Les produits liquides sont ___________________ et _______________________.

A

prêts directement à l’analyse, ne nécessitent pas une étape de mise en solution ou en suspension.

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9
Q

Revivification des produits liquides: ______________, _____________, ____________.

A
  • Prendre 05 Aliquotes de 100 ml;
  • Laisser à la température du labo pendant 30 minutes, on appelle cette étape : « revivification »;
  • Étiqueter cette Solution mère ou suspension mère (+1), car aucune dilution n’a été appliquée pour l’obtenir.
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10
Q

Les produits solides ou semi-solides nécessitent une _____________.

A

mise en solution ou en suspension

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11
Q

Mise en solution des produits faciles (poudre de lait): _______________, _________________, _________________, _________________.

A

● Peser 25 g du produit et ajouter 9 parties soit 225 ml du diluant PSE (Peptone sel eau);
● Mélanger à l’aide d’un mélangeur péristaltique ou manuellement;
● Laisser à température ambiante pour 30 minutes (revivification);
● La suspension obtenue est la suspension mère (10-1), car on a appliqué une dilution au 1/10.

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12
Q

Mise en suspension des Produits de texture plus complexe: ___________________, ________________, ________________, ____________________, _____________________.

A

● Verser le PSE dans le sachet stérile contenant 25 gr de produit à analyser;
● Broyer l’aliment 6 à 8 minutes en utilisant un automate : broyeur de type STOMACHER;
● Verser le contenu dans le flacon de TSE;
● Laisser à température ambiante pour 30 minutes (revivification);
● On obtient ainsi la suspension mère (10-1).

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13
Q

Le Pré-Enrichissement est utilisé uniquement la _____________________.

A

la recherche qualitative

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14
Q

Le Pré-Enrichissement est préconisé pour_____________, ______________.

A

● Recherche de Salmonelles/Shigelles;
● Recherche de Listeria monocytogenese.

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15
Q

Pour pré enrichissement des salmonelles on utilise _______________.

A

L’eau peptonée tamponnée

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16
Q

Pour pré enrichissement de L. monocytogenes on utilise ______________.

A

bouillon Frazer

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17
Q

Pour les solides, les dilutions commencent à partir de la suspension/solution mère ___.

A

10-1

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18
Q

Pour les liquides, les dilutions commencent à partir de la suspension/solution mère __.

A

(+1)

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19
Q

Méthodes générales d’ensemencement : _____________________, _____________________.

A
  • Étalement sur la surface d’un milieu gélosé solidifié (milieu pré-coulé);
  • Incorporation en profondeur d’un milieu solide.
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20
Q

Étalement sur la surface d’un milieu gélosé solidifié (milieu pré-coulé) : _________________, ______________, _______________, _______________, __________________.

A
  • Gélose coulée au préalable et laissée refroidir jusqu’à solidification. (Des boites pré-coulées avec le milieu adéquat sont disponibles dans le commerce);
  • Avec une pipette graduée et stérile, prendre un volume connu de la solution/suspension mère ou de ses dilutions décimales;
  • Étaler à l’aide d’un râteau à la surface de la gélose;
  • Incuber couvercle en bas à la température spécifique (pour chaque germe);
  • Les colonies poussent à la surface de la gélose.
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21
Q

Incorporation en profondeur d’un milieu solide : ________________, _____________, ______________, ______________, ________________, _________________.

A
  • Dans deux boites de pétri vides;
  • Avec une pipette graduée et stérile, mettre un volume connu de la solution/suspension mère ou de ses dilutions décimales, dans la boite vide;
  • Couler environ 15 ml du milieu à une température de 45°C (fondu, liquide);
  • Mélanger l’inoculum et le milieu avec des mouvements (O.8.S);
  • Laisser refroidir jusqu’à solidification et incuber couvercle en bas à la température spécifique;
  • Les colonies vont pousser dans la masse de la gélose (I.e. pas à la surface).
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22
Q

Les germes recherchés se répartissent en deux catégories: ___________________ et __________________.

A

Germes indicateurs de contamination;
Germes pathogènes.

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23
Q

Germes indicateurs de contamination: ________________, __________________., ____________________.

A
  • Ne sont pas forcément pathogène;
  • Leurs présence avec des seuils relativement élevés, peut indiquer sur une contamination et éventuellement sur la présence de germes pathogènes;
  • 04 groupes: générale, fécale, fécale et tellurique, liée aux conditions de stockage.
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24
Q

Germes indicateurs de contamination générale: _______________, ____________, ______________, ________________.

A

→ Ce sont des Bactéries, levures ou moisissures ;
→ Capables de se multiplier, en formant des colonies dénombrables ;
→ En aérobiose dans un milieu gélosé déterminé (milieu pauvre) et à 30 °C, pendant 72 h;
→ Sont des indicateurs de contamination générale, qui donne un aperçu général sur le degré de contamination du produit analysé.

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25
Q

Mode opératoire germes indicateurs de contamination générale: _____________, ______________, ______________.

A

→ Incorporation en profondeur, d’un volume de 1 ml, d’un milieu PCA (Plate Count Agar);
→ A partir de la suspension/ solution mère et les différentes dilutions (voir PII.5);
→ Incuber les boites couvercles en bas 72 ±3h à 30°C (après solidification).

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26
Q

Germes indicateurs de contamination générale - Lecture: ___________________ , ______________________

A

● Dénombrer tous types de colonies qui poussent dans la masse du milieu (pas à la surface);
● Prenez deux dilutions successives avec un dénombrement entre 15 et 300 colonies.

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27
Q

Principe du calcul des germes indicateurs de contamination générale: ___________________________________________________

A

Moyenne pondérale des deux dilutions successives avec un dénombrement entre 15 et 300 UFC (unité formant colonie ou colonie tout court, en assumant que chaque germe présent dans l’aliment se multiplie après incubation pour donner une colonie distincte)

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28
Q

Formule pour calculer les germes indicateurs de contamination générale: ____________________________________.

A

Σc / V (n1 + 0.1n2)d1

N : le nombre d’UFC /g ou/ml de l’aliment.
Σc : Ensemble des colonies des boites interprétables (entre 15 et 150 colonie).
V : volume de solution déposé dans chaque boite.
n1 : Nombre de boites considérées à la première dilution (généralement 02 boites par dilution)
n2 : Nombre de boites considérées à la seconde dilution (généralement 02 boites par dilution).
D1 : Facteur de la première dilution retenue (dans l’exemple donné, D1 = 10-2)

29
Q

On distingue trois types de germes indicateurs de contamination fécale: ____________________, _____________________ et ____________________.

A

coliforme totaux;
coliforme fécaux ou thermotolérant;
Escherichia coli.

30
Q

Caractéristiques des coliformes totaux (CT): __________, __________, ___________, ____________, ______________.

A

● Bacilles à Gram négatifs, de la famille des entérobactéries;
● Aérobies ou anaérobies facultatifs;
● Non sporulés;
● Oxydase(-);
● Capables de se multiplier en présence de sels biliaires à une température 30° à 37°C, et de fermenter le lactose avec production d’acide et de gaz en 24 à 48 heures.

31
Q

Mode opératoire de recherches des CT: ________________, ______________, _________________, ________________.

A

● Inoculer la série de boites avec 1 ml des différentes dilutions;
● Couler une couche de gélose de VRBL (gélose au cristal Violet et au Rouge neutre, Biliée et Lactosée) ≈ 15 ml, refroidie à la température ≈ 45± 1 °C;
● Mélanger et laisser solidifier;
● Incuber la série de boites 24 ± 2 h à 30°, 35° ou 37°C.

32
Q

Calcul des CT: ____________________________________ avec la formule _____________.

A

Retenir 2 dilutions successives (plus fortes dilutions) 15 ≤ c ≤ 150;
Σc / V (n1 + 0.1n2) * d1

33
Q

Caractéristiques des coliformes fécaux: _____________, ____________.

A

● Font partie des coliformes;
● Poussent à 44°C (thermo-tolérants).

34
Q

Les coliformes fécaux sont recherchés de la même manière que les coliformes totaux avec la seule différence de _____________________.

A

Température 44°C

35
Q

Caractéristiques d’Escherichia coli: _____________, ____________, _______________, ___________________, _______________________.

A

● Représente 90 % des coliformes fécaux;
● La même définition que les coliformes fécaux;
● Production d’indole à 44 °C;
● Exclusivement fécale, son seul réservoir, étant les intestins des animaux à sang chaud;
● Sa présence dans les aliments ne laisse aucun doute sur une contamination fécale.

36
Q

Mode opératoire de recherche d’Escherichia coli: _______________, _______________, ________________, ________________, ________________, __________________, _______________.

A

● Inoculer 1 ml des différentes dilutions dans des boites de pétri vide;
● Couler une couche de gélose de TBX (Tryptone Bile X-Glucuronide) ≈ 15 ml à la température ≈ 45± 1 °C;
● Mélanger et laisser solidifier;
● Incuber la série de boites 24 ± 2 h 0ou 44°C;
● Dénombrer les colonies bleues qui poussent en masse, noter la dilution correspondante;
● Retenir 2 dilutions successives avec des dénombrements compris : 15 ≤ c ≤ 150;
● Utiliser la formule précédente.

37
Q

La recherche de germes indicateurs de contamination fécale et tellurique implique la recherche des _____________________ dont le chef de fil est ________________.

A

spores des anaérobies sulfito-réducteurs (ASR);
Clostridium perfringens

38
Q

Caractéristiques de Clostridium perfringens: ________________, ______________, ___________________.

A

● Formes de résistance de bacilles à Gram positif;
● Anaérobies strictes;
● Se développant en anaérobiose à 37°C ± 1 en 24h et ou 48h en milieu sélectif.

39
Q

Mode opératoire de recherche des germes indicateurs de contamination tellurique: __________________, __________________, __________________.

A

● Prendre 0.1 ml des différentes dilutions. Après chauffage à 80°C pendant 10 min pour détruire les formes végétatives et ne garder que les spores;
● Étaler avec un râteau, en surface du milieu TSC (Tryptone Sulfite Cyclo-sérine) d’une manière homogène (étalement en surface);
● Incuber à 37°C 24 à 48 h en anaérobiose strict (étuve spéciale ou dans des jarre avec des kits générateurs d’anaérobiose GENBOX®).

40
Q

Dénombrement des germes indicateurs de contamination tellurique: _____________, _________________, _________________.

A

● Dénombrement des colonies noires;
● Retenir les dilutions avec un dénombrement entre 15 et 150 UFC;
● Utiliser la formule précédente.

41
Q

Caractéristiques des germes indicateurs de contamination par Conditions de stockage: ________________, _____________, ________________, _________________.

A

→ Micro-organismes capables de croître en conditions extrêmes : (basse température, acidité, faible humidité);
→ Unicellulaire : levures;
→ Filamenteux : moisissure;
→ Certaines moisissures peuvent produire des mycotoxines cancérigènes.

42
Q

Mode opératoire de la détermination des germes indicateurs de contamination par conditions de stockage: ______________, _____________, ____________, _____________, ________________.

A

● Étalement en surface;
● 0.1 ml des différentes dilutions;
● Milieu Sabouraud + Chloranphenicol;
● Incuber à température ambiante pendant 3 à 5 jours couvercle en haut;
● Incuber des boites témoins.

43
Q

Lecture des résultats d’incubation des germes indicateurs de contamination par conditions de stockage: ________________, _______________, _________________.

A

→ Retenir les dilutions avec un dénombrement entre 15 et 150 UFC;
→ Dénombrer les levures et les moisissures en même temps;
→ Utiliser la formule précédente. En tenant compte du volume ensemencé (0.1ml).

44
Q

Caractéristiques du Staphylococcus aureus: ________________, _____________, __________________, ________________.

A
  • Cocci à Gram (+);
  • Isolées ou regroupées en grappes de raisin;
  • Catalase (+) et coagulase (+) lecithinase (+);
  • Certaines souches sont entérotoxinogènes.
45
Q

Mode opératoire de recherche de S. aureus: __________, __________, ___________, _______________.

A

● En surface;
● 0,2 ml de chaque dilution en surface du milieu Baird-Parker (plasma + jaune d’œuf + tellurite);
● Étaler à l’aide d’un râteau;
● Incuber : à 37°C pendant 24 -48h.

46
Q

Lecture des résultats d’incubation de S. aureus: _______________, _____________, _________________.

A

→ Dénombrer les colonies noires, entourées d’un halo transparent (coagulase+) + précipité autour (lécithinase +);
→ Retenir les dilutions avec un dénombrement entre 15 et 150 UFC;
→ Utiliser la formule précédente.

47
Q

La gravité du Staphylococcus aureus dans les aliments réside dans sa capacité de produire des ________________.

A

entérotoxines

48
Q

Toutes les souches de S. aureus sont entérotoxiques. (V/F)

A

F: Certaines uniquement

49
Q

Dans le cadre d’une investigation de TIAC, il est important d’effectuer une recherche du ____________________ de S. aureus.

A

gène qui code pour la toxine (PCR)

50
Q

Caractéristiques de Bacillus cereus: ___________, ________, _________, ___________, ________________.

A

● Bacille à Gram positif;
● Aéro-anaérobie facultatif;
● Mobile, sporulée;
● Enterotoxinogène;
● Colonies typiques : Milieu sélectif complet (agar-agar MYP).

51
Q

Mode opératoire de mise en évidence de B. cereus: _________________, __________________, _____________________.

A

→ Étaler en surface;
→ Porter aseptiquement 0,1ml de chaque dilution sur milieu (Milieu complet agar agar MYP);
→ Incubation de ces boîtes en aérobiose à 30°C pendant 18 heures à 48 heures.

52
Q

Lecture des résultats d’incubation de B. cereus: ____________________, _______________, _________________, _________________.

A

● Compter sur chaque boîte les colonies présumées de B. cereus;
● Les colonies sont grandes, roses(man-) /zone de précipité (lécithinase+);
● Retenir les dilutions avec un dénombrement entre 15 et 150 UFC.
● Effectuer un test de l’hémolyse avec la gélose au sang de mouton (BETA hémolyse).

53
Q

Caractéristiques de Salmonella spp: __________, _________, ____________, _______________.

A

● Entérobactéries;
● Bacilles à Gram négatif;
● Mobiles, aéro-anaérobies facultatifs;
● Oxydase(-), nitrate réductase +, glucose(+), lactose -, H2S + (ou-).

54
Q

Mode opératoire de la recherche de salmonelles: _________________, ________________, ________________.

A
  • Premier enrichissement (I) : Ensemencer les bouillons de Rappaport Vassiliadis et de sélénite à partir de la solution pré-enrichie;
  • Ensemencer une boite de gélose Hektoen à partir du tube SFB;
  • Ensemencer une boite de gélose au XLD (Xylose-Lysine-Désoxycholate) à partir du tube de Rappaport Vassiliadis;
  • Incuber 18h-24h à 37°C.
55
Q

Lecture de résultats de l’incubation salmonelles: _______________, _____________, ________________, _______________, ________________.

A

→ Colonies ayant un contour régulier;
→ Vertes avec/sans centre noir sur Hektoen;
→ Colonies rose sur XLD:
→ Confirmer par un TSI et une galerie biochimique(API20E);
→ Exprimer le résultat : Présence/Absence de Salmonella spp /25 g ou 25 ml du produit.

56
Q

Caractéristiques de Listeria monocytogenes: ___________, ___________, __________, ___________, ______________.

A

● Petits bacilles trapus, gram +;
● Aéro-anérobie facultatif;
● Mobiles;
● Catalase +;
● Beta hémolytique.

57
Q

Recherche uniquement de L. monocytogenes - Protocole: ___________________, _______________, _________________.

A

● À partir du pré-enrichissement sur milieu FRAZER incubé à 37°C;
● Isolement sur milieux chromogène Listeria;
● Incuber : à 37°C pendant 24 -48h.

58
Q

Lecture des résultats d’incubation de L. monocytogenes (recherche uniquement): _____________, ____________, _____________.

A

● Confirmation des colonies suspectes : Colonie bleue / verte avec auréole opaque;
● Test d’hémolyse, catalase et Api Listeria®;
● Rendre le résultat : absence ou présence /25g ou 25 ml du produit.

59
Q

Recherche et dénombrement de L. monocytogenes - Protocole: _______________, __________________, _______________.

A

● Étaler en surface;
● Porter aseptiquement 0,1ml de chaque dilution (PSE) en surface du milieu chromogène Listeria;
● Incubation des boîtes en aérobiose à 37 °C pendant 18 h à 48 h.

60
Q

Lecture et dénombrement de L. monocytogenes: _______________, ______________, ________________, ________________.

A

● Compter sur chaque boîte les colonies présumées: Colonie bleue / verte avec auréole opaque;
● Retenir les dilutions avec un dénombrement entre 15 et 150 UFC;
● Confirmer par test d’hémolyse (beta);
● Utiliser la formule de dénombrement.

61
Q

L’interprétation d’une analyse microbiologique est étroitement liées aux constantes suivantes: _________, ____________, __________, ____________.

A

n : nombre d’unités analysées (généralement 05);
m : nombre de germes /g ou ml ou UFC/ g ou / ml : valeur en dessous de laquelle la qualité du produit est considérée comme satisfaisante ;
M : nombre de germes /g ou ml : Valeur au dessus de laquelle la qualité du produit est considérée comme inacceptable ;
c : nombre maximal d’unités : peuvent dépasser « m » tout en étant inférieur à « M » sans que le lot ne soit rejeté.

62
Q

Pour chaque catégorie de produits alimentaires, il existe des germes bien précis à rechercher. (V/F)

A

V

63
Q

Interprétation d’une analyse microbiologique selon un plan à trois classes : ________________________, ____________________, ___________________.

A
  • Il existe un intervalle entre la valeur m et M;
  • Si le dénombrement d’un paramètre se trouve entre m et M, il faut vérifier les autres unités analysées (05) et la valeur ‘’c’’;
  • c=x, veut dire que x unités au max peuvent avoir un dénombrement entre m et M.
64
Q

Si un seul dénombrement dépasse la valeur M, le paramètre est directement considéré comme inacceptable. (V/F)

A

V

65
Q

Interprétation selon un plan à deux classes : ___________________, __________________.

A
  • Un seul seuil à ne pas dépasser, aucune des 05 unités analysées ne doit dépasser ce seuil (c=0);
  • Le seuil est généralement une variable binaire (absence/présence).
66
Q

Pour dire que le lot est conforme microbiologiquement, tous les paramètres doivent être conformes. (V/F)

A

V

67
Q

La nouvelle réglementation préconise la recherche de: ____________, ____________, ________________.

A

● Histamine dans les espèces de poissons riches en histidine des familles Scombridae (thons, bonites, maquereaux), Clupeidae (harengs, sardines), Engraulidae (anchois), Coryfenidae (mahi mahi), Pomatomidae, Scombresosidae;
● Cronobacter spp : Préparations destinées aux nourrissons;
● Campylobacter spp : Produits à base de volaille.

68
Q

En cas de TIAC, une ________________ est obligatoire.

A

Recherche de toute la panoplie

69
Q

En cas de TIAC, on recherche: ____________, __________, __________, ____________.

A

→ Autres Bactéries;
→ Virus;
→ Parasites;
→ Toxine/toxique.

70
Q

Techniques rapides en microbiologie alimentaire incluent ________, ________, ________ et visent à rechercher ___________, _________, __________, _____________.

A

PCR, PCR en temps réel, Chromatographie;
Matériel génétique, toxines, protéines structurales, métabolites.

71
Q

Inconvénients des techniques rapides en microbiologie: _______________, ___________, ______________.

A

● Pas de différence entre les germes vivants et morts;
● Difficulté de réaliser un dénombrement;
● Coût.